Anticorps monoclonaux

28/11/2014
TD Immuno S5 2014-2015
Pr : Nadia . Dakka
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• Anticorps monoclonaux
Population homogène d ’anticorps issus d ’un
« seul et unique » clone de cellules B
Les anticorps monoclonaux sont des anticorps
ne reconnaissant qu'un seul type d'épitope sur
un antigène donné . Ils sont par définition tous
identiques et produits par un seul clone
de plasmocyte.
• Avantage
Spécificité
Affinité
Production massive et constante
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Les Ac monoclonaux sont disponibles indéfiniment une fois les
hybridomes immortalisés.
La production des Ac monoclonaux nécessite moins d’animaux
par rapport à la production des Ac polyclonaux,
Les Ac polyclonaux peuvent être obtenus beaucoup plus
rapidement, à moindre coût et avec moins de compétences
techniques que pour produire des Ac monoclonaux.
Les Ac polyclonaux sont obtenus en 4 à 8 semaines, tandis que la
production d’Ac monoclonaux peut prendre 3 à 6 mois.
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Principe de la production des anticorps
monoclonaux
• Les partenaires de fusion
– cellules B extraites d ’organes lymphoïdes secondaires (rate,
ganglions), des plasmocytes sécrétant des Ac.
– cellules myélomateuses de souris
• Méthode de fusion
– Chimique
– Physique
• Sélection, clonage
in vitro d’un hybridome producteur d’Ac.
• Expansion
multiplication de clones de l’hybridome, soit in vitro, soit in vivo,
afin d’obtenir de grandes quantités d’Ac.
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• L'immunisation
– Les sources d'antigènes
degré de pureté : élimination des
contaminants
– L'immunisation de l'animal
• dose et forme de l ’antigène
• adjuvants
• voie et nombre d ’injection
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Immunogène
Antigène
n
Protéine protéine lyophilisée
Haptène
Quantité de l’immunogène par injection et par animal.
2 - 50 µg
en solution
2 - 50 µg
Incluse dans un gel de polyacrylamide
1 - 10 µg
Peptide
1 - 10 µg
Nucléotide
glucide
Substance chimique naturelle ou synthétique
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Les animaux, souris ou rats, utilisés à la fois pour
l’immunisation en vue de la préparation du clone
d’hybridome et pour la production d’Ac monoclonaux
(production in vivo), doivent être de même souche
(syngéniques) pour des raisons d’histocompatibilité.
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César Milstein et Georges Köhler (1970)
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+
IMMUNISATION DE LA SOURIS
AVEC L’ANTIGÈNE ÉTUDIÉ
OBTENTION DES LYMPHOCYTES
SPECIFIQUES
UTILISATION DE
CELLULES MYELOMATEUSES
OBTENTION DES CELLULES IMMORTELLES
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Les cellules de myélome utilisées dans les hybridomes n’ont pas
l’enzyme
HGPRT
(hypoxanthine-guanine
transférase) . Elles ont
phosphoribosyl
perdu la capacité de produire des
immunoglobulines (mutants Ig-).
Les cellules de myélome n’apportent que leur propriété
d’immortalité aux cellules résultant de la fusion.
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L’autre
partenaire
de
la
fusion
est
une
population
de
plasmocytes possédant l’enzyme: HGPRT et sécrétant les Ig.
Ces plasmocytes contribuent à la capacité des hybridomes à
survivre dans le milieu de culture sélectif HAT (Hypoxanthine,
Aminoptérine et Thymidine).
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On fusionne les plasmocytes sécrétant des anticorps
dirigés spécifiquement contre l'antigène choisi, avec
des cellules de tumeur :
myélomes (cellules
immortelles) .
La fusion membranaire se fait grâce à l'addition
de polyéthylène glycol (PEG) et permet ainsi
d'obtenir des hybridomes.
Les hybridomes ont la capacité de se multiplier plus
rapidement que les plasmocytes productrices
d'anticorps et de développer indéfiniment des
anticorps spécifiques.
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Méthodes de fusion
• Fusion chimique: Poly Ethylène Glycol (PEG)
– fusion des membranes cytoplasmiques
– rendement de fusion élevé
– DMSO renforce la viabilité cellulaire
• Fusion physique : Electrofusion
– Ouverture de pores dans la cellule par des pulses électriques
– technique onéreuse
– moins destructrice
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+
Par méthode chimique
FUSION DES MEMBRANES
CELLULAIRES AVEC DU PEG (poly éthylène glycol)
SELECTION
Par méthode physique
FUSION DES MEMBRANES CELLULAIRES
PAR ELECTROPORATION
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Sélection, clonage
• Sélection sur milieu sélectif HAT
–
–
–
–
–
–
–
Hypoxanthine Aminopterine Thymidine
facteurs de croissance : IL6 β mercaptoethanol
sérum de veau fœtal
fibroblastes
sous atmosphère CO2
seuls les hybridomes se développent
1 x 105 cellules/ml
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Après fusion des hybridomes, les cellules sont réparties dans
des plaques multipuits de telle sorte qu'il n'y ait qu'une cellule
par puits. le mélange de toutes ces cellules (hybrides et cellules
parentales) est placé sur un milieu de culture sélectif : HAT
(Hypoxanthine, Aminoptérine et Thymidine) .
Les plasmocytes non fusionnés meurent rapidement et les
cellules myélomateuses utilisées ayant un gène non fonctionnel
pour une enzyme intervenant dans la synthèse des nucléotides
(HGRPT) sont incapable de survivre dans un milieu HAT .
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La sélection par le milieu HAT dépend du fait que
les cellules de mammifères peuvent synthétiser les
nucléotides par deux voies différentes :
La voie de novo et la voie de récupération en
incorporant directement les purines et les
pyrimidines dans les nucléotides nécessaires à la
synthèse de l’ADN et de l’ ARN.
Les enzymes qui catalysent la voie de récupération
incluent HGPRT et TK. Une mutation de l’un ou
l’autre de ces deux enzymes bloque la capacité de la
cellule à utiliser la voie de récupération et entraîne
sa mort dans le milieu HAT .
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+
Culture sur milieu HAT
Hypoxanthine Aminoptérine Thymidine
Cellule myélomateuse HGPRT-
MORT CELLULAIRE
Impossibilité de se
diviser
HYBRIDOME
SELECTIONNE
Lymphocyte B
MORT CELLULAIRE
disparition après
quelques divisions
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+
Dès que la croissance est suffisante, il faut
propager les cultures d'hybridomes productrices de
l'anticorps désiré, les conserver et les cloner. Deux
méthodes sont utilisées pour obtenir un clone à
partir d'une cellule :
Sur milieu gélosé
Par dilution limite
Une colonie = une cellule initiale Une ou zéro cellules par puit
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• Sélection d ’une seule cellule et mise en culture.
Clonage dans l’Agar, dans l’Agarose
on visualise directement les colonies cellulaires dans
l ’agar, que l ’on remet en culture après dilution.
Clonage par dilution limite
la plus utilisée dans les laboratoires.
Réalisée directement dans une plaque de microtitration
peu onéreuse
Longue.
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• Immuno précipitation
– Ouchterlony, Mancini
• Radio immunologie (RIA)
– radio isotope
• Immuno enzymologie (EIA)
– enzyme (ELISA)
• Compteur de cellules (Cell sorter)
• Western Blot
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+
TEST SUR LE SURNAGEANT DE CHAQUE PUIT
• DE LA PRESENCE DES ANTICORPS MONOCLONAUX
PAR LA METHODE ELISA
• DU TYPE D’ANTICORPS PRODUIT
PAR DES METHODES D’IMMUNOPRECIPITATION
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• 2 techniques ELISA
– Compétition
– Sandwich : la plus utilisée pour ce propos
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ELISA sandwich
Ac de capture
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• Au bout d'une dizaine de jours, on recherche dans
chaque puits la présence d'anticorps dirigés contre
l'antigène utilisé pour immuniser la souris.
• On peut alors multiplier les clones positifs
(producteurs de l’Ac d’intérêt) soit en continuant de
les cultiver in vitro, soit en utilisant l’animal immunisé
pour une production in vivo.
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• Avantages
– Concentration élevée en
Ac Mo
– Pas d’intermédiaire
industriels
• Inconvénients
– Utilisation de l’animal
– Présence de protéines
murines
– Contaminants
– Stress de la souris
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+
Amplification des hybridomes
Production par
cultures cellulaires
OBTENTION DES
ANTICORPS MONOCLONAUX
Production dans
les liquides d'ascites
CONSERVATION
DES HYBRIDOMES
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• Injection des hybridomes dans le péritoine de souris
• Développement d ’une tumeur : ascite
• Prélèvement des anticorps par ponction de liquide d ’ascite
• Rendement élevé 20 g/l
• C’est la souris qui régule les conditions de culture !
• Purification du liquide d ’ascite nécessaire
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•
•
Préparation de l’échantillon
Purification principale
– Chromatographie
d’affinité
• Affinité
immunologiques
– spécifique du Fc.
– spécifique de
l’antigène.
Ligand
Impuretés
Analyte
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Fixation
Elution
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Elution par déplacement
avec l’antigène libre
Elution par déplacement
avec un analogue
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• Avantages
– Pas d’utilisation d ’animal
– Production de grandes
quantité d’anticorps
– Pas de personnel
d’animalerie
– Pas de contaminant
• Inconvénients
– Nécessite l’utilisation de
sérum de veau fœtal
– Contamination par les
hybridomes morts
– Ac de plus faible affinité
– Plus chère pour de petites
production
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•
•
•
•
Basé sur la technologie des fibres creuses.
Diminution des coûts, du temps.
Augmentation de la production 3 à 5 g/l, de la pureté
Pas ou peu de contaminant (6 x moins)
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• Spécificité
– Reconnaissance d ’un seul motif épitopique
– Réactions croisées, non-spécifiques.
– Maintient de l ’activité après modification chimique
• L'affinité
– Élevée
– Constante et contrôlée
• Avantages de ce type de production
– Constante
– reproductible
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Tout anticorps est caractérisé par deux propriétés :
- capacité de lier spécifiquement un ou plusieurs ligands
- participation à une ou plusieurs fonctions effectrices
(activation du complément, stimulation de la phagocytose …)
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Premières applications thérapeutiques des Ac Mo en 1981 avec le
muromonab utilisé dans le traitement des épisodes de rejet aigu en
transplantation d'organes.
Inconvénients des premiers anticorps monoclonaux produits par des
hybridomes murins:
- une demi-vie courte
-immunogènes.
Les progrès de la biologie moléculaire, au cours des années 1980, ont
permis la production d'abord d'anticorps chimériques, puis d'anticorps
humanisés et enfin d’anticorps totalement humains.
Depuis, le développement et l'utilisation clinique de ces anticorps
monoclonaux ont connu un essor spectaculaire.
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100% souris
Ac monoclonal
de souris
Ac monoclonal
chimérique
75% homme
25% souris
90 % homme
10% souris
Ac monoclonal
humanisé
Ac monoclonal
humain
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La chimérisation et l'humanisation permettent de varier les
isotypes
des
potentielles
anticorps
de
donc
l'anticorps
de manipuler
(par
exemple,
les
la
fonctions
fixation
du
complément).
Un autre avantage: augmentation de la demi-vie de l'anticorps,
qui passe de moins de 20 heures avec les anticorps murins à
plusieurs jours, s'approchant des 21 jours des IgG humaines
endogènes.
Ceci permet une meilleure utilisation de ces Ac comme agents
thérapeutiques.
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ANTICORPS ENTIEREMENT HUMAINS:
Des anticorps entièrement humains et biocompatibles sont
cependant de plus en plus recherchés pour l'immunothérapie
passive.
Trois grands types de technologies ont été mis au point pour les
obtenir:
- Techniques d'hybridomes,
- Phage display,
- Souris transgénique.
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Les anticorps monoclonaux utilisés comme médicaments ont tous
une nomenclature se terminant par « mab », acronyme de
« monoclonal antibody » comme par exemple le rituximab.
Ils sont utilisés dans les tests de grossesse, dans de nombreux
domaines de la recherche en biologie et par de nombreuses
techniques (cytométrie en flux, western blots.), dans les tests
d'immuno-hématologie.
Les anticorps monoclonaux, en monothérapie ou en association
avec une chimiothérapie, ont pris place aujourd’hui dans le
traitement standard de nombreuses formes de cancers.
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Herceptin (Anticorps humanisé)
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Biotechnologie
Recherche
Diagnostic
Thérapeutique
Cytométrie en flux, Immunohistochimie
Etude des lignées cellulaires
Etude des marqueurs des cellules non lymphocytaire
Etudes des cellules pathologiques
Purification d’antigènes
Recherche d’Ac ou d’Ag
Immunodétection (ELISA, RIA)
Imagerie (immunoscintigraphie)
≈ 20 Ac monoclonaux utilisées en thérapeutique
+ 70 Ac monoclonaux en essais cliniques
traitement immunosuppresseur
(Maladies auto-immunes et inflammatoires, rejet de greffe)
traitement anticancéreux (élimination des cellules cancéreuses)
cardiologie (traitement anti-thrombotique)
infectiologie (prophylaxie antivirale)
allergologie (traitement asthme)
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Beaucoup d’espoirs soulevés dans le traitement de
nombreuses pathologies lourdes, pour lesquelles les
thérapeutiques conventionnelles ont montré leurs limites.
(thérapeutiques ciblées)
Toutefois le coût de ces produits est un facteur limitant
leur utilisation, d’autant plus que de nombreuses
applications restent des traitements de longue durée.
Enfin et en l'absence d'études de tolérance à long
terme, le suivi et la prudence sont indispensables pour
mieux évaluer les risques liés à leur utilisation.
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