FACULTAD DE CIENCIAS NATURALES Curso de Posgrado TÉCNICAS HISTOLÓGICAS VEGETALES Docentes a cargo: Dra. Mabel Sandra Feijóo Dra. Sara Estela Fernández Fundamentación: En investigaciones diversas, de fisiología, farmacognosia, plantas medicinales, temas forenses, arqueología, paleoetnobotánica, dieta de herbívoros, adulterantes y contaminantes de alimentos y medicamentos, madera de construcción, efectos de la contaminación ambiental y estudios vegetales en general, es necesario realizar exámenes de anatomía de las planta requiriendo para ello de las técnicas histológicas específicas para cada situación, las cuales, por sí solas o correlacionadas con otros estudios permiten interpretar procesos. Estos conocimientos permitirán decidir las estrategias y el instrumental más adecuado a los fines investigados. . Objetivos: Adquirir conocimientos sobre las bases teóricas y procedimentales para optimizar el uso de los microscopios óptico y electrónico e instrumental auxiliar relacionado. Interpretar el fundamento y experimentar con técnicas de frecuente aplicación en el estudio de la histología de las plantas. Consolidar y ampliar el criterio para la selección de técnicas a aplicar ante determinadas situaciones problemáticas. Desarrollar habilidades relacionadas con las técnicas de obtención y procesamiento de imágenes en microscopía. CONTENIDOS MÍNIMOS: Colección y conservación de muestras vegetales. Materiales de uso frecuente en el laboratorio de Biología. Drogas y formulaciones. Fijación. Deshidratación. Inclusión. Realización de cortes a mano libre y con micrótomo. Maceración. Diafanización y clarificación. Coloraciones: vitales y supravitales. Montaje. Pruebas histoquímicas. Observación: microscopio estereoscópico, óptico y electrónico. Preparaciones de materiales para ser observados con microscopio electrónico. Preparaciones de materiales para ser observados con fluorescencia. Técnicas para observación y recuento de cromosomas. Técnicas palinológicas. Técnicas específicas para distintos grupos taxonómicos. Registro, interpretación y documentación de las observaciones. PROGRAMA ANALITICO UNIDADNº1: Recolección, acondicionamiento, conservación y rotulación del material de materiales vegetales. Tratamiento del material de herbario. Colección y Jardines. Bancos de germoplasma. Herbarios. UNIDAD Nº 2: Materiales de uso frecuente en el laboratorio de Biología. Drogas y formulaciones. Técnicas histológicas: Recomendaciones útiles. Fijación. Fijadores: composición, preparación, uso y propiedades. Realización de cortes a mano libre y con micrótomo. Técnicas. Decoloración, coloración y montaje. Técnica de inclusión en parafina. Proceso de deshidratación, clarificación, infiltración. Tipos de micrótomos: de mano, rotatorios tipo Minot., de congelación. Xilótomo. Ultramicrótomo. UNIDAD Nº 3: Diafanización y clarificación. Técnicas para diafanización de hojas y órganos florales; obtención de epidermis foliar o de su impronta; obtención de nervadura. Técnicas rápidas: Peeling. Raspado para tricomas. Técnica de Metcalfe. Maceración. Técnicas. UNIDAD Nº 4: Colorantes y coloraciones: vitales y supravitales. Coloraciones directas e indirectas, simples y dobles, combinadas sucesivas y simultáneas, ortocromáticas y metacromáticas. Medios de montaje: preparaciones. Glicerina, gelatina-glicerina, goma de Prosen, bálsamo de Canadá. Preparaciones temporarias, semipermanentes y permanentes. Pruebas histoquímicas. Técnicas. UNIDAD Nº 5: Instrumentos ópticos: microscopio estereoscópico, óptico y electrónico. Unidades de uso corriente en microscopía. Escala logarítmica de las dimensiones microscópicas. Preparaciones de materiales para ser observados con microscopio electrónico de barrido (MEB) y de transmisión (MET). Técnicas básicas para secado en punto crítico, uso del microscopio electrónico de barrido y microsonda EDAX. UNIDAD Nº 6: Preparaciones de materiales para ser observados con fluorescencia. Técnicas. Técnicas citológicas para observación y recuento de cromosomas. Técnicas palinológicas. Técnicas de ablandamiento para materiales duros. UNIDAD Nº 7: Técnicas específicas para los distintos grupos taxonómicos. Registro, interpretación y documentación de las observaciones. Registro de imágenes: uso de cámara clara, fotomicrografía. Micromedición. Análisis de imágenes en pantalla y por computación. Destinatarios del curso: Graduados de carreras con formación en Ciencias Biológicas o afines Modalidad de dictado: Teórico-práctico. Duración: una semana Carga horaria total: 60 horas (45 horas presenciales. 15 no presenciales) Modalidad de evaluación y requisitos de aprobación: Teórico-práctica con evaluación final. Asistencia 80%. CRÉDITOS: 6 (seis) Bibliografía no exhaustiva: ALBRECHTOVÁ, J. 2004. Plant Anatomy in Environmental Studies. Department of Plant Physiology, Faculty of Science, Charles University in Prague, Czech Republic. 33 pp. BARBOZA, G.E. y col. 2001. Atlas Histomorfológico de Plantas de Interés Medicinal de Uso Corriente en Argentina. Museo Botánico Córdoba. BURÓN ROMERO,I.; GONZÁLEZ REYES,J.A.; MALAGÓN POYATOM, M. DEL M.; VILLALBA MONTORO, J. M. 2010. Metodología de la Experimentación en Biología Celular-Técnicas Básicas en Microscopía Electrónica de Transmisión. Departamento de Biología Celular, Fisiología e Inmunología Universidad de Córdoba. BRACEGIRDLE, B.; MILES, P. 1975. Atlas de estructura vegetal. Ed. Paraninfo. Madrid. CUTLER, D. 1987. Anatomía Vegetal Aplicada. Bs. Aires. Librería Agropecuaria. D’AMBROGIO DE ARGÜESO, A. 1986. Manual de Técnicas de Histología Vegetal. Hemisferio Sur S.A. Bs. Aires. DIZEO DE STRITTMATTER, C. G. 1973. Nueva técnica de diafanización. Bol. Soc. Arg. Bot. 15(1): 126-129. DIZEO DE STRITTMATTER, C. G.1980. Coloración con "Violeta de Cresilo". Bol. Soc. Arg. Bot. 19(1-2): 273-276. DIZEO DE STRITTMATTER, C. G. 1984. Métodos de clarificación en materiales vegetales. Parodiana 3(1): 169-174. DIZEO DE STRITTMATTER, C. G. 1986. Uso de técnicas de fluorescencia en materiales vegetales. Parodiana 4(2): 213-220. ESAU, K. 1982. Anatomía de las Plantas con Semilla. Bs. Aires. Hemisferio Sur. GATTUSO, M.A. y GATUSO, S.J. 1999. Manual de procedimientos para el análisis de drogas en polvo. Ed. Universidad Nacional de Rosario. HARRIS, N. and OPARKA, K. J. 1994. Plant Cell Biology. A practical approach. Oxford University Press. N.Y. JOHANSEN,D.A.1940.Plant Microtechnique. Mc Graw-Hill, New York, 523 pp. KRAUS, J.E. & ARDUIN, M. 1997.Manual básico de métodos em morfología vegetal. EDUR. Brasil. O`BRIEN, T. P. & McCULLY, M. E. 1981. The study of plant structure principles and selected methods. Termarcarphi PTY. Ttd., Melbourne Australia. PAREDES, C.; QUINTANAR, A.; ACOSTA, S.; OROZCO, G.; PÉREZ, C. & TORRE-BLANCO, A. 2001. Histoquímica de la corteza de cinco angiospermas de una selva baja de Oaxaca. Madera y Bosques 7 (2) :49-61. SASS, J. E. 1958. Botanical Microtechnique. Iowa State College Press. Iowa. TIVANO J. C. 1989. Goma de Prosen: medio de montaje para material vegetal. Bol. Soc. Arg. Bot. 26(1-2): 135-37. ZARLAVSKY, G. E. 2014. Histología Vegetal: Técnicas simples y complejas. 1ra. ed. Sociedad Argentina de Botánica. Buenos Aires. 198 pag. Páginas en Internet y artículos en Revistas Científicas del área. - Número de vacantes: Mínimo: 6 Máximo: 15 Fecha propuesta: del 27 al 31 de julio de 2015.
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