7. AUTRES PRELEVEMENTS BACTERIO/MYCOLOGIE Hémocultures PRE2-ENR-001 Manuel de prélèvement Version 5 du 02/05/2014 Page 21 sur 40 Seule la version électronique fait foi Prélèvements pour recherches bactériologiques Prendre les renseignements cliniques Prélever dès le début du processus infectieux Avant tout traitement antibiotique ou 48h après l’arrêt des antibiotiques Acheminer rapidement au laboratoire Type de prélèvements Frottis divers (écouvillonnage) Plais, muqueuses, cavités...) Frottis gorge Pus, abcès profonds Tissus Expectorations et autres prélèvements broncho pulmonaires Technique Frotter le site infectieux avec l’écouvillon Pour les plaies, prélever à la limite de la zone saine et pas dans la nécrose En cas de surfaces sèches, humidifier au préalable l’écouvillon avec de l’eau physiologique stérile. Si nécessaire (présence de crème ou souillure) nettoyer avant avec de l’eau physiologique stérile Frotter fort au niveau des amygdales et de la paroi postérieure de la muqueuse pharyngée Eviter le contact avec langue et joues (abaisse langue) Nettoyer la région avec de l’eau physiologique stérile. Récupérer le pus par ponction à la seringue (recherche d’anaérobies++) ou dans un pot stérile Prélever aseptiquement le tissu et le placer dans un flacon d’eau physiologique stérile A réaliser le matin au réveil, Se rincer la bouche à l’eau claire, Faire un effort de toux profond, Recueillir le crachat dans le flacon stérile, Conserver le flacon à température ambiante et l’apporter au laboratoire au maximum dans les 2 heures après le recueil. PRE2-ENR-001 Manuel de prélèvement Version 5 du 02/05/2014 Matériel Ecouvillon simple + E Swab Abaisse langue Ecouvillon simple + E Swab Seringue Pot stérile Flacon stérile Page 22 sur 40 Seule la version électronique fait foi Type de prélèvements Selles Technique Consignes à respecter pendant les 2 à 4 jours précédant le recueil des selles : les poudres inertes (charbon, kaolin, alumine, bismuth), les lavements huileux, les laxatifs, l’huile de paraffine, les pommes et poires cuites. Pour les personnes très constipées qui ne peuvent émettre des selles sans médicament, elles peuvent utiliser un suppositoire au beurre de cacao ou faire un petit lavement d’eau. Selles solides : Transférer une noisette de selles dans le pot Selles liquides : remplir la moitié du flacon Pot stérile Tube stérile pour examen bactériologique Liquide de ponction Ponction (acte médical) Sperme La veille du prélèvement, le patient doit boire suffisamment afin d’uriner fréquemment pour permettre le rinçage de l’urèthre. Uriner une dernière fois 1/2h avant le recueil de sperme. Avant le prélèvement par masturbation, le patient se lave les mains et le pénis, rince et sèche. Matériel : drains, cathéters, stérilets Prélever aseptiquement le matériel PRE2-ENR-001 Manuel de prélèvement Version 5 du 02/05/2014 Matériel Flacon stérile Flacon stérile Page 23 sur 40 Seule la version électronique fait foi Protocole d’utilisation de l’E SWAB (écouvillon de transport) 1 2 3 4 5 6 Ouvrir le sachet Prélever avec l’écouvillon Ouvrir le tube et mettre l’écouvillon dedans Rompre la tige et laisser l’écouvillon dans le tube Revisser le bouchon fermement Identifier le prélèvement : nom, prénom, type de prélèvement NE PAS METTRE UN AUTRE ECOUVILLON L’Eswab permet une conservation du prélèvement 48h (24h pour gonocoques) à température ambiante PRE2-ENR-001 Manuel de prélèvement Version 5 du 02/05/2014 Page 24 sur 40 Seule la version électronique fait foi Recueil des selles pour coproculture en établissement de soins Protocole d’utilisation d’un Fecal Swab (vert) Recueillir les selles dans un pot à coprologie puis transférer sur Fecal Swab (mode opératoire ci-dessous) Le pot et le Fecal Swab seront à donner au laboratoire dans un délai de 48h. 1. 2. 3. 4. 5. 6. Ouvrir le sachet Prélever un pois de selles avec l’écouvillon Ouvrir le tube et mettre l’écouvillon dedans. Rompre la tige et laisser l’écouvillon dans le tube Revisser le bouchon fermement Identifier le prélèvement : nom prénom, type de prélèvement Le fecal Swab permet une conservation des selles 48h à température ambiante PRE2-ENR-001 Manuel de prélèvement Version 5 du 02/05/2014 Page 25 sur 40 Seule la version électronique fait foi Prélèvements pour recherche mycologique Renseignements cliniques, notion de voyage, traitement en cours Lésion cutanée Ongles (onyxis) Cuir chevelu (teignes) Poils (folliculite) Plis (inter-orteils, inguinal, aine …) Doigt (périonyxis) Eliminer les croûtes, les plaques macérées. Gratter avec une curette en périphérie de la lésion (bourrelet), récupérer des squames dans une boîte de Pétri ou un flacon stérile. Si pas de squames, passer un écouvillon préalablement humidifié avec de l’eau physiologique stérile. Couper la partie atteinte périphérique et la jeter, gratter à la curette l’ongle au niveau de la frontière zone saine /zone atteinte(ou limer si l’ongle est trop dur), recueillir la poudre au niveau du lit de l’ongle dans une boîte de Pétri ou un flacon stériles. Prélever au niveau de la zone d’alopécie (sans cheveux), les squames, cheveux cassés, croûtes avec une curette, une pince à épiler. Mettre dans une boîte de Pétri ou un flacon stériles. Si pas de squames, gratter puis écouvillonner avec un écouvillon humidifié (eau physiologique stérile) Prélever à la pince à épiler, écouvillonner si suintant Prélever à la périphérie par grattage à la curette =/- écouvillon humidifié si pas de squame Presser le bourrelet inflammatoire à la base de l’ongle, écouvillonner le pus. PRE2-ENR-001 Manuel de prélèvement Version 5 du 02/05/2014 Page 26 sur 40 Seule la version électronique fait foi Prélèvement pour recherche parasitologique Renseignements cliniques, notion de voyage, traitement en cours Acheminer rapidement au laboratoire Examen Kystes Œufs parasites dans les selles (KOP) Recherche d’oxyures (scotch test) Parasites sanguins :Paludisme, trypanosomiase, filariose Identification de vers Identification d’ectoparasites PRE2-ENR-001 Manuel de prélèvement Version 5 du 02/05/2014 Technique Selles solides : une noisette de selle dans un flacon stérile Selles liquides : remplir la moitié du flacon En cas de recherche d’amibes végétatives recueil des selles au laboratoire et examen dans le ¼ d’heure Préconisations pour le prélèvement A effectuer au lever avant la toilette et les premières selles • Décoller le scotch de son support (Utiliser du scotch transparent). • Appliquer le coté adhésif sur la marge anale en écartant les plis et le maintenir en appuyant quelques secondes. • Retirer le scotch et l’étaler sur la lame support. • Renouveler l’opération avec le second scotch. • Replacer les 2 lames dans l’étui. • Identifier l'étui avec le nom, prénom et date de naissance si cela n'a pas été fait au laboratoire • Rapporter l’étui au laboratoire dans les plus brefs délais. Matériel Flacon stérile Répéter 3 fois le prélèvement à un jour d’intervalle Prise de sang Tube EDTA Préparer un flacon stérile contenant de l’eau physiologique stérile. Transférer le ver dans ce flacon Préparer un flacon stérile contenant de l’alcool à 70° ou un papier filtre humide. Transférer le parasite dans ce flacon Flacon et sérum physiologique stérile Scotch, lame Flacon stérile Page 27 sur 40 Seule la version électronique fait foi 8. EPREUVES DYNAMIQUES Certains examens nécessitent de prévoir un temps de réalisation plus ou moins important (exemple : l’épreuve de HGPO se réalise sur 2 heures), ou un jour précis. Pour l’ensemble de ces tests, la réalisation au laboratoire est recommandée et le patient reste au laboratoire. Test Modalités Test de O’Sullivan Quelle que soit l’heure du dernier repas ou le moment de la journée Dépistage du diabète gestationnel - Prélever un tube SEC GEL ou un fluorure oxalate (gris) si domicile pour une glycémie Recommandé par l’HAS / Service des initiale (T0). recommandations professionnelles / Juillet - Administrer à la patiente par voie orale 50 g de glucose (solution aromatisée) 2005 - Prélever à T=1h un tube Sec Gel ou un fluorure oxalate (gris) si domicile Test d’hyperglycémie provoquée par voie orale : HGPO Test OMS Recommandé par le Collège National Des Gynécologues Obstétriciens Français PRE2-ENR-001 Manuel de prélèvement Version 5 du 02/05/2014 Le patient doit être à jeun depuis 12 h. - Prélever un tube SEC GEL (= temps T0 minutes). - Administrer à la patiente par voie orale la solution aromatisée contenant la quantité de glucose prescrite par le médecin ou 100 g en l’absence de précision sur l’ordonnance - Prélever de nouveau aux temps : 60, 90 et 120 minutes. - Recueil des urines : T0, T60, T90 et T120 minutes (au minimum un recueil à T0 et un recueil en cours d’épreuve) Il peut être demandé de pratiquer aux mêmes temps un dosage d’insuline Prélever dans ce cas un tube en plus (voir Cerba) en notant l’heure de prélèvement sur chaque tube Le patient doit être à jeun depuis 12h - Prélever un tube SEC GEL ou 1 fluorure oxalate (gris) si domicile (= temps T0 minutes). - Administrer à la patiente par voie orale 75g de glucose (solution aromatisée) - Prélever un tube SEC GEL ou un fluorure oxalate (gris)si domicile à T=1h et T=2h après ingestion du glucose Page 28 sur 40 Seule la version électronique fait foi Test Test au Synactène rapide Test HELI-KIT Test respiratoire à l’urée Helicobacter pylori PRE2-ENR-001 Manuel de prélèvement Version 5 du 02/05/2014 Modalités Adulte : Synacthène® 0,25mg Enfant : Synacthène® 0,25mg/m2 (surface corporelle) sans dépasser 0,25mg - Prélever le patient à jeun à 8h (T0) - Faire l’injection en IM du synacthène® - Prélever à T0+30’ et T0+60’ après l’injection Etre à jeun, et ne pas avoir fumé ou bu depuis la veille. Avoir arrêté son traitement antibiotique depuis au moins 4 semaines Avoir arrêté son traitement anti-sécrétoire depuis au moins 2 semaines (liste disponible en annexe) - le patient boit la moitié (100mL) du verre préparé avec la solution d’acide citrique (1 sachet dans 200 ml d’eau) - ll souffle immédiatement dans 2 tubes, pour effectuer le premier prélèvement (dosage initial du rapport C13/C12 dans le CO2 expiré) - Plonger une paille au fond du tube et demander au patient de souffler pendant 15 secondes - Dissoudre l’urée marquée dans le restant de solution d’acide citrique et le faire boire au patient (100ml) en déclenchant le chronomètre - Après 30 minutes, le patient souffle à nouveau dans 2 tubes pour le 2ème prélèvement d’air expiré. Le prélèvement est transmis à un laboratoire spécialisé. Page 29 sur 40 Seule la version électronique fait foi Liste non exhaustive des médicaments à arrêter avant le test Respiratoire à l’Urée. Anti-sécrétoires IPP Inexium Lanzor Ogast Mopral Omeprazole Zoltum Eupantol Inipomp Pariet Anti-H2 Stomedine Tagamet Pepcidac Pepdine Nizaxid Azantac Raniplex Pepciduo PRE2-ENR-001 Manuel de prélèvement Version 5 du 02/05/2014 Anti-acides et pansements Autres Cytotec Keal/ Ulcar Acidrine Actapulgite Bedelix Bolinan Contracide Digestif Gastropulgite Gelox Gelusil Isudrine Kaomuth Maalox Marga Moxydar Rocgel Siligaz Smecta Xolaam Mutésa Neutrose Pepsane Phosphalugel Poly-Karaya Polysilane Rennie Riopan Page 30 sur 40 Seule la version électronique fait foi
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