TECO® Proinsulin Human Intakt Proinsulin ELISA Testanleitung Deutsch Katalog No. TE1012 © 11/2016 | TECOmedical Group, Switzerland TECO® human Intakt Proinsulin ELISA-Kit Der Kit enthält folgende Reagenzien und Materialien: Symbol Bezeichnung Intakt Proinsulin Antikörper-beschichtete Mikrotiterplatte 12 Streifen à 8 Kavitäten (insgesamt 96, einzeln brechbar) in einem Rahmen, gebrauchsfertig Format 1 Platte Blockierungspuffer gebrauchsfertig 1 x 1,5 ml Antikörper-HRP-Konjugat gebrauchsfertig 1 x 11 ml TMB Substrat gebrauchsfertig 2 x 15 ml Waschlösung 10 fach konzentriert 1 x 40 ml Stopplösung – 0,5 M H2SO4 0,5 M Schwefelsäure, gebrauchsfertig 1 x 15 ml Standard A 0 pmol/L, lyophilisiert 2 x 3,0 ml Standard B lyophilisiert, Konzentration siehe Datenblatt 1 x 1,0 ml Standard C lyophilisiert, Konzentration siehe Datenblatt 1 x 1,0 ml Standard D lyophilisiert, Konzentration siehe Datenblatt 1 x 1,0 ml Standard E lyophilisiert, Konzentration siehe Datenblatt 1 x 1,0 ml Standard F lyophilisiert, Konzentration siehe Datenblatt 1 x 1,0 ml Kontrolle 1 lyophilisiert, Sollwert siehe Datenblatt 1 x 1,0 ml Kontrolle 2 lyophilisiert, Sollwert siehe Datenblatt 1 x 1,0 ml Testanleitung 1 Stück 3 Lagerung Den Kit bei 2-8°C aufbewahren. Nicht einfrieren. Nicht verwendete Reagenzien bei 2–8 °C aufbewahren. Verwendungszweck Der TECO® human Intakt Proinsulin ELISA Kit ist ein „two-site“ sandwich enzyme-linked immunosorbent in-vitro Test für die quantitative Bestimmung von intaktem Proinsulin in humanem Plasma und Serum. Klinische Bedeutung Proinsulin wird in den ß-Zellen der Bauchspeicheldrüse hergestellt und anschließend in Insulin und C-Peptid gespalten. Bei gesunden Menschen werden im Plasma nur geringe Konzentrationen an intaktem Proinsulin gefunden. Bei Patienten mit Typ-2-Diabetes mellitus und einer ausgeprägten Insulinresistenz kommt es jedoch durch den gestiegenen Insulinbedarf zu einer erhöhten Ausschüttung von intaktem Proinsulin, welches relativ schnell abgebaut wird. Intaktes Proinsulin wird aufgrund einer Vielzahl von verschiedenen Studien und Publikationen als ein unabhängiger kardiovaskulärer Risikofaktor angesehen. Sowohl das intakte Molekül, als auch dessen Abbauprodukte hemmen die Fibrinolyse durch Stimulation des Plasminogen-AktivatorInhibitors (PAI-1). Nüchternwerte von intaktem Proinsulin können in der klinischen Praxis als hochspezifischer Marker einer klinisch relevanten Insulinresistenz eingesetzt werden. Intaktes Proinsulin ist hilfreich bei der Auswahl einer geeigneten Therapie gegen die Insulinresistenz und als Verlaufsparameter zur Kontrolle der Therapieeffekte auf die Sekretionsstörung der ß-Zellen. Werden erhöhte Nüchternspiegel an intaktem Proinsulin bei Patienten mit Typ-2-Diabetes mellitus festgestellt, können diese als insulinresistente Patienten eingestuft und entsprechend therapiert werden, um das Risiko kardiovaskulärer Folgeschäden zu reduzieren. Erhöhte Nüchternwerte an intaktem Proinsulin können auch bei Patienten mit einem Insulinom auftreten. Hierbei handelt es sich um einen gutartigen Tumor des Pankreas, der eine pathologisch erhöhte Ausschüttung an Insulin verursacht. 4 Literatur 1 Zethelius B, Byberg L, Hales CN, Lithell H, Berne C. Proinsulin is an independent predictor of coronary heart disease: report from a 27-year follow-up study. Circulation 7: 2153 – 2158, 2002. 2 Nordt TK, Bode C, Sobel BE. Stimulation in vivo of expression of intra-abdominal adipose tissue plasminogen activator inhibitor type I by proinsulin. Diabetologia 44: 1121-4, 2001. 7 Hanley AJ et al. Increased proinsulin levels and decreased acute insulin response independently predict the incidence of type 2 diabetes in the insulin resistance atherosclerosis study. Diabetes 51: 1263-1270, 2002. 8 Kricka L. Human anti-animal antibody interferences in immunological assays. Clinical Chemistry 45: 942-956, 1999. 3 Pfützner A, Pfützner AH, Larbig M, Forst T. Role of intact proinsulin in diagnosis and treatment of type 2 diabetes mellitus. Diab Technol Ther 6: 405-412, 2004. 9Pfützner A, Kann P, Pfützner AH, Kunt T, Larbig M, Weber MM, Forst T. Intact and total proinsulin: new aspects for diagnosis and treatment of type-2diabetes. Clinical Lab. 50 (2004) 567-573 4Pfützner A, Kunt T, Hohberg C, Mondok A, Pahler S, Konrad T, Lübben G, Forst T. Fasting intact proinsulin is a highly specific indicator of insulin resistance in type 2 Diabetes. Diabetes Care 27: 682-687, 2004. 10Langenfeld M, Forst T, Standl E, Strotmann HJ, Luebben G, Pahler S, Kann P, Pfuetzner A. IRIS II Study: Sensitivity and Specificity of Intact Proinsulin, Adiponectin and the Proinsulin/Adiponectin Ratio as Markers for Insulin Resistance. Diab. Technol. Ther. 6 (2004) 836-843 5Piovesan A, Pia A, Visconti G, Terzolo M, Leone A, Magro G, Cesario F, Borretta G. Proinsulin-secreting neuroendocrine tumor of the pancreas. J Endocrinol Invest 26: 758-61, 2003. 6 Paule Housa et al. First direct assay for intact human proinsulin. Clinical Chemistry 44: 7, 1514-1519, 1998. 5 Testprinzip Der TECO® human Intakt Proinsulin ELISA Kit ist ein sensitiver „two-site“ sandwich enzymelinked immunosorbent assay. Die Mikrotiterplatte ist mit einem monoklonalen Antikörper, spezifisch für die C-Peptid/Insulin A Kettenbindung beschichtet. Dieser Antikörper bindet die intakt Proinsulin Epitope: des-(31,32)-Proinsulin und split-(32,33)-Proinsulin, nicht aber Insulin, CPeptid oder andere „des“- und „split“-Formen. Im ersten Schritt werden die Patientenproben mit einer Blockierungspufferlösung inkubiert. Die Kavitäten werden danach gewaschen um Serum-/Plasmakomponenten zu entfernen. Im zweiten Inkubationsschritt wird ein enzymmarkierter monoklonaler Proinsulin-Antikörper zugegeben. Dieser Antikörper ist spezifisch für die Insulin β /C-Peptid-Kettenbindung. Der Antikörper bindet die intakt Proinsulin Epitope: des-(64,65)-Proinsulin und split-(65,66)Proinsulin, nicht aber Insulin, C-Peptide oder andere „des“-und „split“-Formen. Durch die Kombination der beiden monoklonalen Antikörper wird nur intaktes humanes Proinsulin gemessen. Nicht gebundene enzymmarkierte Proinsulinantikörper werden ausgewaschen und die verbleibende Enzymaktivität nach der Zugabe von TMB gemessen. Die Intensität der Farbentwicklung ist proportional zur Konzentration des Proinsulins in der Patientenprobe. Nicht mitgelieferte, benötigte Materialien • Pipetten für 50 µl, 100 µl, 150 µl und 300 µl • Messbehälter für die Rekonstitution oder Verdünnung von Reagenzien • Absaugvorrichtung und Multi-Kanal-Pipette oder automatische • Waschvorrichtung für ELISA Platten • Aqua dest • Vortexmischer • ELISA-Plattenlesegerät (geeignet für 96-Well-Formate und Messungen • bei 450 und 405 nm, mit 590-650 nm als Referenzwellenlänge) • ELISA-Plattenschüttler (400 rpm) (Orbitalschüttler) • Software für die Auswertung der Ergebnisse 6 Warnhinweise und Vorsichtsmaßnahmen Dieser Kit ist nur für die in-vitro-Diagnostik geeignet und sollte nur von Fachpersonal durchgeführt werden. Die Anweisungen sorgfältig befolgen. Die Verfallsdaten auf den Etiketten und die spezifische Stabilität der rekonstituierten Reagenzien beachten. Weitere ausführlichere Informationen zur Sicherheit befinden sich im „Materials Safety Data Sheet“. Material menschlichen Ursprungs, das für die Herstellung des Kits verwendet wurde, wurde getestet und zeigte keine Reaktion auf HIV1 und 2 sowie HCV-Antikörper und HbsAg. Die Kitbestandteile sollten dennoch so gehandhabt werden, als seien sie zur Übertragung eines Infektionserregers fähig. TECOmedical AG kann nicht für einen eventuellen Verlust oder Schaden haftbar gemacht werden, der durch Nichtbeachtung der Testanleitung entsteht. 1. Verwendungszweck: zur in-vitro Diagnostik. 2.Alle Proben als potenziell gefährliches biologisches Material behandeln. Beim Arbeiten mit diesem Kit und den Proben allgemein gültige Vorsichtsmaßnahmen befolgen. 3.Behälter und ungenutzte Inhaltsstoffe gemäß den Anforderungen bundesweit, landesweit und örtlich geltender Bestimmungen entsorgen. 4.Die mitgelieferten Reagenzien als eine zusammengehörende Einheit vor dem auf der Verpackung angegebenen Verfallsdatum verwenden. 5.Die Reagenzien des Assays wie angegeben lagern. 6.Die beschichteten Teststreifen nicht verwenden, wenn der Beutel beschädigt ist. 7. Jede Probe als Duplikat testen. 8.Für ein zügiges und effizientes Dosieren von Flüssigkeiten wird der Gebrauch von Mehrkanalpipetten empfohlen. 9.a) 0,5 M Schwefelsäure ist ätzend und kann zu Verbrennungen führen. b) TMB und Blockierungspuffer vorsichtig handhaben. Nicht einnehmen. Berührung mit Haut, Augen und Kleidung vermeiden. Bei Berührung mit Wasser abwaschen. Bei Einnahme einen Arzt konsultieren. 10.Natriumazid wird als Konservierungsstoff verwendet. Der unbeabsichtigte Kontakt mit Pufferlösungen, die Natriumazid enthalten, bzw. deren Einnahme, kann zu Reizungen der Haut, der Augen oder des Mundes führen. Natriumazid kann in Abflussrohrleitungen aus Blei, Kupfer oder Messing explosive Metallazide bilden. Zum Beseitigen der Reagenzien mit viel Wasser nachspülen um Ansammlungen von Aziden zu vermeiden. 7 09/ 296 Antikörper-HRP-Konjugat 1 Fläschchen (11 ml) mit humanem Proinsulinantikörper gebunden an Meerrettichperoxidase (HRP). Gebrauchsfertig. Konservierungsmittel: Neomycin und Merthiolat. Lagerung bei 2–8 °C bis zum Verfallsdatum. TMB Substrat 2 Fläschchen (15 ml) Tetramethylbenzidin in Citrat-Phosphatpuffer und DMSO. Gebrauchsfertig. Lagerung bei 2–8 °C bis zum Verfallsdatum. Waschlösung 1 Fläschchen (40 ml) Puffer mit Tween 20. Konservierungsmittel: Streptomycinsulfat und Amphotericin. Den Inhalt des Fläschchens mit Aqua dest. auf 400 ml (End-Volumen) auffüllen. Bei 4 °C bleibt die verdünnte Waschlösung 6 Monate stabil. Unverdünnt bei 2–8 °C lagern bis zum Verfallsdatum. Stopplösung – 0,5 M H2SO4 1 Fläschchen (15 ml) 0,5 M H2SO4. Gebrauchsfertig. Lagerung bei 2–8 °C bis zum Verfallsdatum. Vorbereitung und Haltbarkeit der Proben Zu beachten Die Blutabnahme muss nüchtern erfolgen um klinische Aussagen treffen zu können. Probenmaterial Nüchterne Blutentnahme. Humanes Serum oder Plasma. Aufgrund besserer Stabilität werden EDTA-Plasma und Heparin-Plasmaproben gegenüber Serumproben bevorzugt. Plasma Die Probenentnahme kann in HbA1C–Röhrchen erfolgen. Diese Proben sind stabil bei Raumtemperatur und sollten innerhalb von 48 Stunden zentrifugiert werden. Plasma im Assay einsetzen oder in Aliquotes bei -20 °C lagern. Intaktes Proinsulin ist bei – 20 °C mehr als 2 Jahre stabil. Mehrmaliges Auftauen und Einfrieren ist zu vermeiden. Serum Vollblut innerhalb von 4 Stunden zentrifugieren. Intakt Proinsulin wird durch Proteasen in Serum abgebaut, Serum nicht länger als 1 Tag bei 2–8 °C aufbewahren. Serum im Assay einsetzen oder in Aliquotes bei -20 °C lagern. Weitere Informationen zur Probenstabilität: Pfützner et al. Clinical and laboratory evaluation of a new specific ELISA for intact proinsulin. Clin Lab 51: 243-249, 2005. 9 300µl Ergebnisanalyse Eine Standardkurve kann erstellt werden, indem die Standardkonzentration auf der x-Achse (lineare Skala) gegen die Extinktion auf der y-Achse (lineare Skala) gesetzt wird. Die Konzentrationen von intaktem Proinsulin der Patientenseren können dann mit Hilfe der Standardkurve abgelesen werden. Eine 4-Parameter-Methode sollte zur automatischen Datenreduktion verwendet werden. Ergebnisse 450 nm (nur Beispieldaten, nicht für die Berechnung der tatsächlichen Ergebnisse verwenden) Standard Extinktion bei 450 nm pmol/l A B C D E F L-Kontrolle 1 H-Kontrolle 2 0,017 0,232 0,709 1,296 2,776 – 0,896 1,650 0,0 4,5 12,9 25 60 117 16,8 (13,4–20,2) 32,4 (25,9–38,8) 11 Ergebnisse 405 nm (nur Beispieldaten, nicht für die Berechnung der tatsächlichen Ergebnisse verwenden) Standard Extinktion bei 405 nm pmol/l A B C D E F L-Kontrolle 1 H-Kontrolle 2 0,017 0,085 0,233 0,416 0,997 1,985 0,290 0,540 0,0 4,5 12,9 25 60 117 16,8 (13,4–20,2) 32,4 (25,9–38,8) Bei jedem Testansatz müssen die Sollwertvorgaben der Kontrollen innerhalb der für jede Charge angegebenen Toleranzen liegen. Das QC-Protokoll mit den Sollwertvorgaben ist im Kit enthalten. Wenn diese Anforderungen nicht erfüllt sind, können die Testergebnisse ungenau sein und der Test sollte wiederholt werden. 12 Referenzwerte Der angegebene Normalwert für intaktes Proinsulin in EDTAPlasma wurde mit dem Human Intakt Proinsulin ELISA an einem Kollektiv von gesunden Männern und Frauen ermittelt. Nüchterne Probanden: ≤11 pmol/l Mittelwert: 3.99 +/- 1.58 pmol/l (SD), Median 3,61 pmol/l Normalkollektiv vs. HOMA-positives Kollektiv Kollektiv von Nicht-Diabetikern im Vergleich zu HOMA positivem Kollektiv (HOMA-Score > 2). Serum - EDTA Plasma Die Regressionsanalyse für den Plasma/Serum-Vergleich: Y (Serum-Wert) = 0,89 x X (Plasma-Wert) r = 0,99 (n = 20) 13 Intact Proinsulin – Glukose-Toleranztest Typ 2 Diabetes ist eine komplexe Erkrankung, die in der Regel mit einer genetischdeterminierten b-Zelldysfunktion, einer (zunächst metabolischen) Insulinresistenz und einer erhöhten hormonellen Aktivität des viszeralen Fettgewebes einhergeht. Intakt Proinsulin ist ein direkter Biomarker für die Funktionalität der b-Zellen und ein spezifischer indirekter Marker für eine klinisch relevante Insulinresistenz, wenn die morgendlichen Nüchternwerte erhöht sind (Pfützner et al., Diabetes Care 2004). In vielen Fällen geht eine b-Zelldysfunktion mit Erhöhung der intakten Nüchtern-Proinsulinspiegel der klinischen Manifestation des Diabetes mit Erhöhung der Blutzuckerspiegel voraus. Im oralen Glukosetoleranztest, kann dieses Stadium der b-Zelldysfunktion durch die induzierte Belastung der ß-Zellen unter Stressbedingungen sogar noch früher gesehen werden. Misst man intakt Proinsulin zusammen mit den Glukosewerten nach 0 h, 1 h und 2 h ermöglichen die Ergebnisse eine Abschätzung des Schweregrades der b-Zelldysfunktion unabhängig von den beobachteten Glukosewerten und damit unabhängig von der Manifestation der Erkrankung. Gesunde Personen zeigen zu jedem Zeitpunkt Werte < 20 pmol/L. Ein Wert > 20 pmol/L nach 1h oder 2h zeigt eine progressive funktionelle Erschöpfung der b-Zelle unter Glukosebelastung bei Prädiabetikern und Diabetikern an. Aufgrund der multiplen Phänotypen der Erkrankung und vor allem auch im Spätstadium der Erkrankung mit massiver Zerstörung der b-Zellen können normale Proinsulinspiegel während des OGTT auch bei manifester Diabeteserkrankung gesehen werden. Glukose Glukose [mg/dL] 250 200 150 Normal 100 Prediabetes 50 Diabetes 0 0 60 120 Zeit [min] intact proinsulin [pmol/L] intact proinsulin 35 30 25 20 15 10 5 0 Normal Prediabetes Diabetes 0 60 Zeit [min] 14 120 Gesunde Probanden Glukose Zeit nach Glukosegabe (Minuten) Mittelwert (mg/dL) SD Bereich (mg/dL) 0 93,6 7,5 81–104 60 140,2 29,4 104.4–178 120 89,7 23,9 67–140 0 3,1 1,9 0,401–7,609 60 10,3 6,8 1,958–19,68 120 10,2 5,2 4,135–17,79 0 102,0 9,3 92–122 60 168,1 56,9 74–243 120 149,4 33,8 93,6–186 0 6,6 4,1 1,82–13,65 60 22,6 8,1 10,15–39,27 120 27,8 5,9 21,23–35,90 0 121,3 19,8 97-162 60 230,4 50,8 164-320 120 212,7 34,1 181-290 0 7,74 7,2 2,47-25,14 60 27,71 5,6 5,54-39,43 120 29,28 6,5 3,94-43,81 Intaktes Proinsulin Zeit nach Glukosegabe (Minuten) Mittelwert (pmol/l) SD Bereich (pmol/l) Prädiabetes Glukose Zeit nach Glukosegabe (Minuten) Mittelwert (mg/dL) SD Bereich (mg/dL) Intaktes Proinsulin Zeit nach Glukosegabe (Minuten) Mittelwert (pmol/l) SD Bereich (pmol/l) Diabetes Glukose Zeit nach Glukosegabe (Minuten) Mittelwert (mg/dL) SD Bereich (mg/dL) Intaktes Proinsulin Zeit nach Glukosegabe (Minuten) Mittelwert (pmol/l) SD Bereich (pmol/l) 15 Verdünnungstest in Plasma und Serum Serum Probe Verdünnungsfaktor erwartet Ergebnis Wiederf. pmol/l pmol/l (%) Plasma Probe Verdünnungsfaktor erwartet Ergebnis Wiederf. pmol/l pmol/l (%) Serum 1 1 2 4 3,98 1,99 1,00 3,98 1,93 0,99 100,00 97,00 99,50 Plasma 1 1 2 4 51,50 25,55 12,78 51,10 29,44 15,78 100,00 115,20 123,50 Serum 2 1 2 4 13,34 6,67 3,34 13,34 6,97 3,90 100,00 104,50 116,90 Plasma 2 1 2 4 54,13 27,07 13,53 54,13 29,87 15,97 100,00 110,40 118,00 Serum 3 1 2 4 3,68 1,84 0,92 3,68 1,84 0,93 100,00 100,00 101,10 Plasma 3 1 2 4 47,15 23,58 11,79 47,15 26,63 15,01 100,00 113,00 127,30 Serum 4 1 2 4 4,62 2,31 1,16 4,62 2,58 1,31 100,00 111,70 113,40 Plasma 4 1 2 4 36,85 18,43 9,21 36,85 19,64 11,37 100,00 106,60 123,40 Serum 5 1 2 4 5,01 2,51 1,25 5,01 2,52 1,45 100,00 100,60 115,80 Plasma 5 1 2 4 38,38 19,19 9,60 38,38 21,30 11,31 100,00 111,00 117,90 Interferenzen Patientenproben können humane anti-Maus-Antikörper (HAMAs) enthalten, die zu inkorrekten Ergebnisse führen können. Um Interferenzen durch HAMAs zu minimieren, wird im Test ein HAMA-Blockierungspuffer verwendet. Eine unvollständige Eliminierung der HAMA Interferenz bei allen Patientenproben kann nicht ausgeschlossen werden. Intakt Proinsulin Resultate, die nicht mit den klinischen Diagnosen und der Patientenhistorie übereinstimmen, sollten überprüft werden. Proben von LADA-Patienten können sehr hohe Konzentrationen an HAMAs und anderen nicht-spezifischen Antikörper enthalten. Kreuzreaktionen Für die genannten Konzentrationen der folgenden Peptide wurden keine Kreuzreaktionen gemessen: Humanes Insulin Humane C-Peptide Proinsulin, des-(31,32) Proinsulin, split-(32,33) Proinsulin, des-(64,65)* Proinsulin, split-(65,66) < 10 000 pmol/L 50 000 pmol/L < 200 pmol/L 5000 pmol/L 200 pmol/L 1000 pmol/L * liegt in Serum- und Plasmaproben nicht vor Bemerkung Die Daten, die in dieser Anleitung aufgeführt sind, dienen nur zur Illustration. Jedes Labor sollte eigene Normal- und pathologische Bereiche für intaktes Proinsulin gemäss GLP-Richtlinien ermitteln und festlegen. 17 Notizen 18 Notizen 19 TECO® human Intakt Proinsulin Testdurchführung – Kurzbeschreibung · Proben und Reagenzien auf RT bringen. Proben durchmischen. · Proinsulin 0-Standard : 2 Flaschen lyophil. 0-Standard mit je 3 ml Aqua dest auflösen. ·B lockierungspuffer-Gebrauchslösung vorbereiten: 1 Teil Blockierungspuffer plus 4 Teile 0-Standard : z.B. 1,2 ml Blockierungspuffer + 4,8 ml Proinsulin 0-Standard mischen (Aufbewahren bei -20°C) · Waschlösung vorbereiten: 1 Flasche (40 ml) konzentrierter Waschpuffer bis auf 400 ml Endvolumen mit Aqua dest auffüllen. · Lyophilisierte Standard bis und Kontrollen + mit je 1 ml Aqua dest rekonstituieren. benötigte Teststreifen vorbereiten 50 µl Blockierungspuffer-Gebrauchslösung in alle Kavitäten pipettieren 50 µl Standards bis Kontrollen + und Proben pipettieren 60 min bei 20–25 °C auf einem Plattenschüttler bei 400 rpm inkubieren Absaugen und 3 x mit 300 µl Waschpuffer waschen, absaugen und auf saugfähiger Unterlage ausklopfen 100 µl Antikörper-HRP-Konjugat in alle Kavitäten pipettieren. 60 min bei 20–25 °C auf einem Plattenschüttler bei 400 rpm inkubieren Absaugen und 3 x mit 300 µl Waschlösung waschen, absaugen und auf saugfähiger Unterlage ausklopfen 150 µl TMB Substrat in alle Kavitäten pipettieren. 15-25 min bei 20 – 25° C auf einem Plattenschüttler bei 400 rpm inkubieren 100 µl Stopplösung in alle Kavitäten pipettieren und 5 Sekunden schütteln Extinktion bei 450 nm bestimmen, Standard bis Extinktion bei 405 nm bestimmen, Standard bis (Quantifizierungssoftware, 4-Parameter: y = (A-D)/(1+(x/C)^B)+D) Referenzwellenlänge 590–650 nm) Bitte lesen Sie die Testanleitung bevor Sie mit der Kurzbeschreibung arbeiten.
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