最近の食中毒発生状況と検査法 大阪府立大学大学院 生命環境科学研究科 獣医学専攻 感染症制御学講座 山崎 伸二 病因物質別食中毒事件・患者・死者数 事件数 患者数 1999 2007 2008 1999 2007 2008 1999 2007 2008 総数 2,697 1,289 1,369 35,214 33,477 24,732 7 7 4 2,356 732 778 27,741 12,964 10,330 4 0 1 825 126 99 11,888 3,603 2,551 3 0 0 67 70 58 736 1,181 1,424 0 0 0 667 42 17 9,396 1,287 168 1 0 0 8 25 17 46 928 115 0 0 0 237 27 34 2,238 2,772 2,088 0 0 0 11 8 21 59 124 230 0 0 1 493 416 509 1,802 2,396 3,071 0 0 0 細菌 総数 サルモネラ属菌 ブドウ球菌 腸炎ビブリオ 腸管出血性大腸菌 ウエルッシュ菌 セレウス菌 キャンピロバクター・ジェジュニ/コリ コレラ菌 NA 0 3 NA 0 37 0 0 0 赤痢菌 NA 0 3 NA 0 131 0 0 0 その他の細菌 ウイルス 56 18 17 1,632 673 515 0 0 0 総数 116 348 304 5,217 18,750 11,630 0 0 0 ノロウイルス 116 344 303 5,217 18,520 11,618 0 0 0 0 4 1 0 230 12 0 0 0 8 10 27 134 93 619 0 0 0 その他のウイルス 化学物質 自然毒 総数 細菌性食中毒原因菌 死者数 年 121 113 152 377 355 387 3 7 3 植物性自然毒 87 74 91 310 266 283 1 4 0 動物性自然毒 34 39 61 67 89 104 2 3 3 その他 1 8 17 1 20 47 0 0 0 不 明 95 78 91 1,744 1,295 1,289 0 0 0 • • • • • • • • • • サルモネラ属菌 ブドウ球菌 ボツリヌス菌 腸炎ビブリオ 腸管出血性大腸菌 ウェルシュ菌 セレウス菌 ナグビブリオ ビブリオ・ミミカス ビブリオ・フルビアリス • • • • • • • • • • キャンピロバクター・ジェジュニ/コリ エルシニア・エンテロコリチカ アエロモナス・ハイドロフィーラ アエロモナス・ソブリエ プレジオモナス・シゲロイデス ノロ(小型球形)ウイルス (H10) コレラ菌(H12) 赤痢菌 チフス菌 パラチフス菌A 1 細菌性食中毒の分類 • 毒素型:細菌の産生した毒素を摂取することにより胃腸 炎を引き起こすもの。 黄色ブドウ球菌のエンテロトキシンやボツリヌス毒素等 • 感染型:菌が体内で増殖しあるいは食品中で増殖した菌 を大量に摂取し胃腸炎を引き起こすもの。 サルモネラ、病原大腸菌等 • 混合型:毒素型と感染型の両方の性質を持つもの。 腸炎ビブリオ(耐熱性溶血毒)、腸管出血性大腸菌(ベ ロ毒素)等 細菌の検査法:PCR法の原理と実践 PCR(Polymerase Chain Reaction)法(DNA増幅法) PCRに絶対必要なもの: 1. 鋳型DNA 2. 酵素:DNA ポリメラーゼ(耐熱性) 3. プライマー:16個から24個程度のオリゴヌクレオチド 4. 基質:dNTP(dATP、dGTP、dCTP、dTTP) 5. バッファー:10 mM Tris-HCl (pH 8.3), 50 mM KCl, 1.5 mM MgCl2 The Molecular Biology of the Cell, Garland Publishing Inc., New York and London 2 腸管出血性大腸菌 ●特 徴:人、動物の糞便に直接・間接的に汚染された食品が原因となる ●潜伏期間:12∼72時間 ●症 状:下痢、腹痛、発熱、嘔吐、溶血性尿毒症症候群を併発し、 特に小児や老人では脳症で死亡することがある ●予防方法:調理器具、手指からの二次汚染防止。調理時の十分な加熱 O157の特徴 •酸性条件に比較的耐性 •乾燥に比較的強い •熱に弱い(75℃1分間以上の加熱で死滅) •消毒剤に弱い(次亜塩素酸ナトリウム等) Shiga toxin (Stx)-phage A サブユニット 分子量 32,500 B サブユニット 分子量7,600 Stx 大腸菌 新潟大学山本達男博 士撮影 志賀毒素(Stx) Stx UV照射 化学物質 A サブユニット: RNA N-グリコシダーゼ O157感染症の特徴 •少量の菌数(50個位)で感染が成立 •小児や老人では重症化しやすい •家族内感染が多く見られる •2次感染が多く見られる •不顕性感染者(健康保菌者)が、感染源となる B サブユニット: レセプター (糖脂質) に結合 O157 Stx Stx1 up Stx1 down Stx Stx Stx Stx Stx 志賀毒素1と2遺伝子を検出するマルチプレックス PCR PCR条件 stx1 (13-M) M 310 bp Stx stx2 (6-F) stx1, stx2 (Sakai) 103 102 101 100 103 102 101 100 103 102 101 100 N M 94℃ 1分 55℃ 1分 A B 72℃ 1分 35 cycle 110 bp Stx2 up Stx2 down Stx1とStx2遺伝子を検出するためのPCRプライマーの結合部位と PCR産物の大きさ 検出限界:約10 (cfu/tube) 3 Campylobacter属細菌の培養(微好気培養)に必要な培養器 カンピロバクター 微好気条件 (85% N2, 5%O2, 10%CO2) 特 徴:家畜、家禽、ペットなどあらゆる動物が保菌している。 鶏肉が原因となることが多い 潜伏期間:2∼7日(平均2∼3日) 症 状:腹痛、激しい下痢、発熱、嘔吐、筋肉痛まれに ギランバレー症候群(多発性神経炎) 予防方法:調理器具、手指からの二次汚染防止 調理時の十分な加熱 代表菌株:Campylobacter jejuni (人の食中毒の原因菌、鶏から高率に分離) C. coli (人の食中毒の原因菌、豚から高率に分離) C. fetus (敗血症の原因菌、まれに人の食中毒) 増殖至適温度:C. jejuni, C. coli, 42℃、C. fetus, 25℃ 原因食品:食肉(特に鶏肉)、牛乳、飲料水、サラダ、 鶏肉関連食品、湧き水、井戸水 加湿用バット 家畜への病原性:ウシやヒツジの流産、ウシやブタの腸炎 カンピロバクターの電子顕微鏡写真 (東京都安全健康センター) 培養ジャー N2-CO2 ダブルガスインキュベーター カンピロバクター(Campylobacter)属細菌の種類と生息場所 Campylobacter属細菌の簡易培養法 病気の種類 水を含ませたティッシュ 菌種 環境中での生息場所 ヒ ト C. jejuni ヒト、ウシ、野鳥、家禽、ペッ ト 下痢、敗血症、ギランバ レー症候群、関節炎 動 物 C. coli ブタ、トリ、家禽、ネコ 下痢 C. fetus ウシ、ヒツジ 敗血症、下痢、流産 C. lari トリ、イヌ、ネコ、サル、二枚 貝 下痢、菌血症 C. upsaliensis ペット、家禽 下痢、菌血症 下痢 C. hyointestinalis ウシ、ブタ、ハムスター、シカ 直腸炎、下痢 増殖性出血性腸炎 C. mucosalis ブタ 下痢 増殖性出血性腸炎 C. sputorum ヒト、ウシ、ブタ、ヒツジ 下痢、口腔膿瘍 腸炎、羊流産 C. laniens ブタ、ウシ C. insulaengrae 海洋鯨類 C. hominis ヒト C. concisus ヒト 歯周病 C. curvus ヒト 歯周病、肺感染症 C. rectus ヒト 歯周病 C. showae ヒト 歯周病 C. helveticus ネコ、イヌ C. gracilis ヒト 下痢、流産 流産、不育症 下痢 頭頸部感染症 4 主要なCampylobacter属細菌の特徴 発育温度 菌種 Campylobacter属細菌の検査上の問題点 カタラー 馬尿酸 ゼ 水解活性 下痢患者からの 分離率* (2000年-2004年) 宿主生物 25℃ 37℃ 42℃ C. jejuni ヒト, 牛, 豚, 鶏, 犬, 猫, 野鳥, 野生動物 - + + + + 94.3% C. coli ヒト, 牛, 豚, 鶏, 犬, 猫, 猿 - + + + - 4.0% C. fetus ヒト, 牛, 羊, カメ + + - + - 1.3% C. hyointestinalis ヒト, 牛, 豚, 鶏, 猿, ハ ムスター, カメ + + + + - < 0.1% C. lari ヒト, 鶏, 犬, 猫, 猿, 野鳥, アザラシ, カキ, カラス貝 - + + + - < 0.2% 3. 培養温度差による発育試験が必要 (C. jejuni, C. coli は25℃で生育せず、42℃で生育可。 C. fetusは25℃で生育し、42℃では生育できない) - + + - - < 0.1% 4. 菌の生化学的性状が酷似し、菌種同定が容易でない ヒト, アヒル, 犬, 猫, C. upsaliensis 猿 1.培養に時間がかかる (2∼3日) 2. 微好気培養に特殊な装置が必要 (ガスパック、インキュベーター等) *東京都立病院で得られたデータ コロニーハイブリダイゼーションによるCampylobacter属細菌のcdt遺伝 子の分布 Probe to C. jejuni Probe to C. coli C. jejuni, C. coli とC. fetus のcdt遺伝子は、3菌種に普遍的に存 在し、菌種間では相同性が低く、菌種内では相同性が高い Probe to C. fetus C. jejuni, 11株、C. coli 10株、C. fetus 10株のcdt遺伝子の塩基配列を解析した Bacterial strain Origin (n*) cdtA cdtB cdtC cdtA cdtB cdtC cdtA cdtB cdtC C. jejuni Clinical (23) 23 23 23 0 0 0 0 0 0 C. jejuni ATCC33560 (1) 1 1 1 0 0 0 0 0 0 C. jejuni ATCC43432 (1) 1 1 1 0 0 0 0 0 0 C. jejuni Animal (2) 2 2 2 0 0 0 0 0 0 C. coli Clinical (17) 0 0 0 17 17 17 0 0 0 C. coli ATCC33559 (1) 0 0 0 1 1 1 0 0 0 C. coli ATCC43478 (1) 0 0 0 1 1 1 0 0 0 C. fetus Clinical (2) 0 0 0 0 0 0 2 2 2 C. fetus Animal (16) 0 0 0 0 0 0 16 16 16 cdtB: 99.4-100, 99.5-100, 99.3-100% (99.0, 99.8, 99.6% in average) C. fetus subsp. fetus ATCC27374 (1) 0 0 0 0 0 0 1 1 1 cdtC: 99.4-100, 99.2-100, 99.3-100% (99.1, 99.8, 99.8% in average) C. fetus subsp. venerealis ATCC19438 (1) 0 0 0 0 0 0 1 1 1 C. lari ATCC43675 (1) 0 0 0 0 0 0 0 0 0 C. hyointestinalis ATCC35217 (1) 0 0 0 0 0 0 0 0 0 C. upsaliensis ATCC43954 (1) 0 0 0 0 0 0 0 0 0 C. helveticus ATCC51209 (1) 0 0 0 0 0 0 0 0 0 菌種間の相同性(C. jejuni, C. coli, C. fetus) cdtA: 50.5-63.2%, cdtB: 62.2-70.2%, cdtC: 52.4-61.4% 菌種内の相同性 (C. jejuni, C. coli, C. fetus) cdtA: 98.6-100, 97.0-100, 97.5-100% (99.4, 99.7, 99.6% in average) cdt遺伝子は、C, jejuni、C. coli、C. fetusを菌 種特異的に検出する標的 Asakura et al., Microb. Pathog., 2007. Asakura et al., Microbial Pathog, 2007. 5 Campylobacter (cdt gene) PCR Campylobacter 属菌の同定法 cdtB cdtC C A Cdt gene C. jejuni, C. coli およびC. fetusのcdtB遺伝子または cdtC遺伝子を増幅し、3菌種 M + 生物学的性状 API Campy + B C. j cdtA CdtB遺伝子増幅産物電気泳動図 f c .f C. + C C. + + c j . c . f C. j C. j C. N C. C C C. c Cytolethal distending toxin (Cdt) C. f Detection and Typing Kit M 遺伝学的性状 714bp cdt gene-based multiplex PCR 533bp 16S rRNA 遺伝子の塩基配列 413bp 馬尿酸分解酵素 (hipO) 遺伝子の PCRによる検出 を同時に検出・同定できる N・・・negative control (E. coli C600) M・・・100 bp ladder 2% agarose C. jejuni C. j : C.jejuni C.jejuni C. c : C. coli C. f : C.fetus : hipO遺伝子陽性 Other campylobacters : hipO遺伝子陰性 鶏肉からのCampylobacterの検出 食品からのCampylobacterの検査・同定法 市販国産鶏肉 12検体 保存や輸送中の菌への損傷 7∼8日 サンプルの調製 検体 1∼2日 1∼2日 2日 増菌培養 分離培養 純培養 42±1℃ 微好気 増菌培地 検体50 g+等量生理食塩水→ストマッカー処理 2日 生化学的性状試験 同定 増菌培養 Bolton培地*またはPreston培地* 42℃、微好気条件 42±1℃ 微好気 選択培地 12、16、24、48時間後 24時間後 増菌培養不可欠 特殊な培養装置が必要 生化学的性状が類似 Campylobacter (cdt gene) PCR Detection and Typing Kitを 用いた簡便、迅速な検査 DNAテンプレートの作製 分離培養 mCCDA*、Skirrow、フィルター培養法 42℃、微好気条件 ボイル法またはDNA精製 ボイル法またはDNA精製 48時間後 菌の分離・同定 *Campylobacter標準法案で用いられている培地 6 カンピロバクターの選択培養法 カンピロバクターの増菌培養法 孔径0.45μmのフィルター 食肉の検査結果例 ( ボルトン増菌後、スキロー培地での分離培養) 結 論 1.PCR法は、簡便、迅速かつ高感度な病原細菌の検出法として有用である。(( 2.PCR法と培養法を組み合わせれば、より正確かつ高率に病原細菌の分離・同 定が可能となる。 ((( カンピロバクター様のコロニー プレート一面に菌が遊走し、カンピロバクター に特徴的なコロニーが認められない。 培養法に基づく検査法では陰性。 Multiplex PCR 陽性 7
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