UNIVERSIDAD DE SAN CARLOS DE GUATEMALA FACULTAD DE CIENCIAS MÉDICAS-CUM UNIDAD DIDÁCTICA DE QUÍMICA-PRIMER AÑO. PRÁCTICAS DE LABORATORIO 2015 SEMANA 26 DETERMINACION E HIDRÓLISIS QUIMICA DE LA SACAROSA Y EL ALMIDÓN Elaborado por: Licda. Sofía Tobías de Rodríguez I. INTRODUCCION Los disacáridos están formados por la unión de dos monosacáridos, generalmente hexosas y son los oligosacárido de mayor importancia biológica. El enlace que se establece entre las dos unidades de monosacáridos recibe el nombre de enlace glucosídico (más correctamente O-glucosídico). La formación del enlace y su hidrólisis es reversible; en la naturaleza requiere la presencia de enzimas hidrolìticas específicas para cada disacárido (maltasa, sacarasa, etc.) Al formarse unos pierden el poder reductor de los monosacáridos y otros lo conservan. La sacarosa o azúcar de caña y remolacha, está formada por glucosa y fructosa, con enlace α-1,2. No posee carácter reductor. Los polisacárido son los carbohidratos más abundantes y se forman por la unión de centenares de monosacáridos mediante enlaces glucosídicos; como ejemplos se pueden citar el almidón, celulosa, glucógeno. El almidón se sintetiza en el proceso de fotosíntesis y se va acumulando en forma de gránulos, siendo la reserva energética de las plantas e indirectamente la fuente de energía primaria para los seres humanos. La energía de estas moléculas se obtiene mediante la rotura de éstas a través del proceso de hidrólisis, el cual se realiza con la presencia de enzimas específicas como la αamilasa, maltasa y α-(1-6) glucosidasa o utilizando un medio ácido y calor. En ésta práctica se efectuará lo siguiente: Hidrólisis de la sacarosa y la determinación del carácter reductor. Hidrólisis del almidón para detectar sus productos. Determinación de la presencia de almidón en algunos alimentos que consumimos diariamente. Verificación de la pérdida de la estructura helicoidal de la amilosa por efecto de la temperatura y su recuperación. II-OBJETIVOS 1. Detectar a través de la reacción con Lugol, la presencia de almidón en diferentes alimentos que se consumen diariamente. 2. Observar la pérdida de la estructura helicoidal de la amilosa por calentamiento y su recuperación por enfriamiento. 3. Realizar la hidrólisis del almidón y detectar los productos intermedios de la misma a través de ensayos usando las reacciones de Benedict y Lugol. II. MATERIALES Y REACTIVOS Gradillas Hornilla eléctrica Mechero de alcohol Pisetas Mortero y Pistilo Papel pH. Lugol Benedict HCl conc. Almidón al 2 % p/ v NaOH al 20 % p/v Sacarosa al 2 % p/v Suspensión de almidón al 2% MATERIAL APORTADO POR LOS ESTUDIANTES. - KIT de laboratorio - una papa pequeña -un trozo de pan francés - ½ onza de pechuga de pollo cocida. - 1 cucharadita de Maicena VI. PROCEDIMIENTO ENSAYO A Hidrólisis de la sacarosa Fundamento Téorico: La sacarosa es un disacárido (glucosa y fructosa) no reductor, por lo que presentará una reacción de Benedict negativa. Pero, si la sacarosa se hidroliza, hirviéndola en medio ácido (HCl), se descompone en sus dos monosacáridos constituyentes, los cuales son monosacárido reductores, con lo que dará positiva dicha reacción. No Reductor Reductor Procedimiento 1. En un tubo de ensayo coloque 5mL de Sacarosa al 2 % p/v y agregue con precaución 5 gotas de HCl concentrado. 2. Coloque el tubo en el baño de María con agua hirviendo, por 5 minutos. 3. Neutralice con NaOH al 20 % p/v, añadiendo primero 5 gotas, tome el pH, usando papel pH, si éste no adquiere color verde-azul, continúe añadiendo NaOH, hasta lograrlo. 4. Continúe el procedimiento en el siguiente cuadro: Tubo No. 1 2 Coloque Agregue Coloquelos 5 mL de Sacarosa al 2% p/v SIN HIDROLIZAR 5 mL de Sacarosa al 2% p/v HIDROLIZADA 1 mL de Reactivo de Benedict En baño de Marìa Durante 3 minutos Resultado +o_ Manifestaciòn ENSAYO A: Determinación de almidón en los alimentos solicitados. 1-Corte cuadros pequeños de 2cm x lado, de los siguientes alimentos: pan francés, papa, pechuga de pollo cocida . Colóquelos en el vidrio de reloj y deje caer en el centro una gota de Lugol. La observación de un color azul-violeta detecta la presencia de almidón. Con los resultados obtenidos, complete el siguiente cuadro ALIMENTO COLOR AL AÑADIR LUGOL RESULTADO +/- PRESENCIA DE ALMIDÓN SI / NO Pan francés Papa Pechuga de pollo ENSAYO B Determinación de la estructura helicoidal de la amilosa por efecto de la temperatura. 1. Coloque 3 mL de la suspensión de almidón al 2 % p/v en un tubo de ensayo. 2. Añada una a dos gotas de Lugol. Este debe adquirir un color azulmorado. 3. Usando una pinza, caliente el tubo en un mechero de alcohol, según la técnica aprendida anteriormente, hasta que desaparezca la coloración adquirida. Trate de que no hierva la mezcla de almidón. 4. Añada agua de chorro en un beacker, y coloque el tubo de ensayo en el agua para que se enfríe. Al enfriarse debe volver a establecer la estructura helicoidal y por lo tanto aparecerá la coloración obtenida antes del calentamiento. ENSAYO C Hidrólisis del almidón, usando un catalítico ácido y calor. Etapas de la hidrólisis del almidón ALMIDON Amilodextrina Eritrodextrina Acrodextrina Maltosa Glucosa COMPONENTE DE LA ETAPA DE HIDRÓLISIS COLORACIÓN CON REACTIVO DE LUGOL ALMIDÓN AMILODEXTRINA ERITRODEXTRINA ACRODEXTRINA MALTOSA GLUCOSA AZÚL MORADO VINO TINTO AMBAR AMARILLO AMARILLO Procedimiento 1. Coloque en un Beacker 50 mL de agua. Caliente el agua a una temperatura entre 60 - 70 ° C y disperse en ella ½ cucharadita de Maicena. 2. Numere 12 tubos de ensayo así: Tubos A 1A 2A 3A 4A 5A 6A Tubos B 1B 2B 3B 4B 5B 6B 3. Coloque en el tubo 1A y 1B, 2 mL de la mezcla de almidón y realice las pruebas de Lugol y Bénedict; estos serán los tubos “testigos”, es decir tal como se presenta el almidón, antes de su hidrólisis. Luego coloque sus resultados en el cuadro que se presenta después del paso 7. 4. Agregue 3 mL de HCl concentrado a la mezcla del almidón que está en el beacker; hágalo con precaución, debido a que contiene HCl el cual es una sustancia corrosiva. Agite la mezcla. 5. Coloque 3 mL del almidón del paso anterior a cada uno de los tubos: del 2A y 2B hasta el 6A y 6 B. 6. Introduzca los tubos al Baño María que debe tener el agua hirviendo. (Agite constantemente) 7. Empiece a tomar tiempo y cada 5 minutos, saque una pareja de tubos empezando con el 2A y 2B y . (Agite constantemente). 8. Después de sacar todos los tubos, déjelos enfriar. (puede colocarlos dentro de un beacker con agua fría) 9. A los tubos “A”: hágales la prueba de Lugol. Observe el color y anótelo en el cuadro respectivo. 10. A los tubos “B”: realíceles la prueba de Benedict. * Debido a que la hidrólisis se hace utilizando un ácido, antes de agregar el reactivo de Benedict, debe neutralizar con NaOH al 20 % p/v. 11. Agregue gota a gota el NaOH hasta que el papel pH se torne verde ó azul. 12. Proceda a añadir el reactivo de Benedict a cada uno de los tubos (recuerde que debe colocarlos en baño de maría). Observe y reporte sus resultados en el cuadro siguiente. TUBO COLOR que observa en el tubo que efectuó la prueba de LUGOL RESULTADO +/- Tubo COLOR que observa en el tubo que efectuó la prueba de BENEDICT RESULTADO +/- Componente de la etapa de hidrólisis detectado * 1A 1B 2A 2B 3A 3B 4A 4B 5A 5B 6A 6B *: Esto se observa con el color adquirido con Lugol. Ver etapas de hidrólisis arriba. V- ANALISIS DE RESULTADOS: _______________________________________________________________ _______________________________________________________________ _______________________________________________________________ _______________________________________________________________ _______________________________________________________________ _______________________________________________________________ _______________________________________________________________ _________________________________________________ VI- CONCLUSIONES: _______________________________________________________________ _______________________________________________________________ _______________________________________________________________ _______________________________________________________________ ____________________________ VII- CUESTIONARIO. 1. ¿Qué le indica la desaparición del color azúl-morado durante la determinación de la estructura de la amilosa? 2. ¿Cómo se puede detectar la presencia de eritrodextrina durante la hidrólisis de almidón? 3. El almidón adquiere la coloración azul-morada antes de ser hidrolizado?. Si__No___¿Por qué? 4. ¿Qué resultados obtuvo en las pruebas de Lugol y Benedict al final de la hidrólisis del almidón? y ¿Al inicio? INICIO PRUEBA Lugol Benedict FINAL RESULTADO PRUEBA Lugol Benedict RESULTADO 5. ¿Qué reactivo utilizó para hidrolizar a la Sacarosa? 6. ¿Cuáles son los productos de la hidrólisis de la Sacarosa? 7. ¿ Qué alimentos de los utilizados en el laboratorio presentaron almidón? 8. ¿Cuál es el producto final de la hidrólisis del almidón? 9. La sacarosa es un azúcar reductor? SI___ NO___ ¿Por qué? 10. Por indicaciones médicas, un paciente debe tener una dieta baja en almidones y debe elegir el consumo de los siguientes alimentos. A dichos alimentos se les efectuó la prueba de lugol y los resultados se dan en el cuadro que se presenta a continuación. Complételo marcando lo que se le indica. ALIMENTO Papa Ejotes Galleta de soda Yuca Atún Filete de pescado Pan Tortilla COLOR al agregar LUGOL Azul Amarillo Azul Azul Amarillo Amarillo Azul Azul +/- ALMIDÓN PRESENTE; SI / NO DEBE MINIMIZAR SU CONSUMO SI / NO VI-BIBLIOGRAFIA. 1. Manual de Prácticas de Laboratorio de Química. Facultad de Ciencias Médicas, USAC. 2014. 2. Timberlake, Karen C. QUIMICA GENERAL, ORGÁNICA Y BIOLÓGICA. ESTRUCTURAS DE LA VIDA. 4ª- Ed., Editorial Pearson, México 2013. http://biologia.laguia2000.com/bioquimica/polisacridos#ixzz3TT4LCPHA DEBE PREGUNTARLE A SU PROFESOR QUE ALIMENTOS LE TOCARÁ TRAER PARA LA PRÁCTICA # 27
© Copyright 2025 ExpyDoc