ES/NSC - CHU Montpellier

Cellules souches et protéinopathies
neurodégénératives :
Carole Crozet
IRMB
Notion de
Protéiniopathies
- « Protein conformational disorders »
- « Protein misfolding diseases »
- Perte de fonction normale
- Gain d’une fonction
anormale => toxicité
Notion de
Protéiniopathies
- Protein conformational disorders
- Protein misfolding diseases
Cellules souches et maladies neurodégératives
Modèle
Cellules souches et
médecine régénérative
Greffe de cellules souches neurales
(pouvant délivrer des molécules qui
vont interférer avec la pathologie)
- inhibition
- réparation
Maladies
à prions
Cellules souches
et physiopathologie
Rôle / statut des cellules souches
endogènes adultes
- compréhension
- orientation
Thérapie génique et
cellulaire des maladies
à prions
Cellules souches
Embryonnaires
Lentivirus
Cellules souches neurales
Impact des maladies à
prions sur les cellules
souches neurales
adultes
Cellules souches
neurales fœtales
Amplification
Encéphalopathies Spongiformes Subaiguës Transmissibles (ESST)
 Maladies dégénératives du système nerveux central, lente (1.5 à 40 ans), fatale
Humaines
Maladie de Creutzfeldt-Jakob (sporadique 1-2 cas /millions/ans, iatrogène)
Insomnie Fatale Familiale (génétique)
Syndrome de Gertsmann Straüssler Scheinker (génétique)
Kuru (infectieuse)
vMCJ (infectieuse)
Animales
Tremblante du mouton (Scrapie), de la chèvre,
Encéphalopathie Spongiforme Bovine, Feline
Maladie du dépérissement chronique des cervidés
 Maladies rares chez l’homme et santé publique
Augmentation MCJ sporadique en Europe
3800 personnes porteuses au Royaume –Uni
Présence de l’agent infectieux dans le sang, le muscle
Transmission (actes chirurgicaux, sanguines, administration de dérivés
sanguins)
Aucun traitement disponible
 Clinique :
-1er signes neurologiques (apathie, perte de la mémoire), et psychiatriques
(dépression)
-Syndrome cérebelleux (myoclonies, ataxie, perte d’équilibre)
-Evolution rapide vers une démence
-Pas de signes inflammatoires, bilans sanguins classiques
 Anatomopathologie
Vacuolisation cérébrale,
anormales (PrPSc)
H&E
Vacuolisation
gliose
réactionnelle,
GFAP
Gliose réactionnelle
dépôts
de
protéines
PrPSc
PrPSc / PrPC
PrPC/PrPSc
PrPSc
PrPC
hélice 
feuillet 
42 % Hélices 
3 % Feuillets  plissés
- soluble
- sensible à la PK
Protéinase K
-
+
conversion
2 1 % Hélices 
54 % Feuillets  plissés
- insolubilité
- agrégabilité
- résistance à la protéinase K
Protéinase K
-
+
 Clinique :
-1er signes neurologiques (apathie, perte de la mémoire), et psychiatriques
(dépression)
-Syndrome cérebelleux (myoclonies, ataxie, perte d’équilibre)
-Evolution rapide vers une démence
-Pas de signes inflammatoires, bilans sanguins classiques
 Anatomopathologie
Vacuolisation cérébrale,
anormales (PrPSc)
H&E
Vacuolisation
gliose
réactionnelle,
GFAP
Gliose réactionnelle
dépôts
de
protéines
PrPSc
PrPSc / PrPC
 Diagnostic : basé sur l’apparition des signes cliniques
=> Tardif
=> Courte fenêtre d’intervention thérapeutique
=> Cerveau très endommagé
Maladies transmissibles
caractérisée
 intraspécifique
 interspécifique
expérimentale
« barrière d’espèce »
Approches thérapeutiques
Molécule testée
ScN2a
>3 jours
Lysat cellulaire
Proteinase K
WB PrPSc
Rouge Congo (Caughey and Race, J Neurochem, 1992)
Amphotéricine B (antifongique) (Mangé et al. J Virol. 2000)
Dendrimères (polyanions cationiques) (Crozet C., et al. J Gen. Virol 2004)
Quinacrine (Doh-Ura et al., J Virol, 2000)
Anticorps anti-PrPC (Perrier V., Solassol J., Crozet C. et al. J Neurochem, 2004)
Dérivés porphyriques (Caughey et al., PNAS, 1998)
Polysulfates (Caughey et al., PNAS, 1998)
...... IN VIVO ?????
Quinacrine
Pentosane polysulfate
Doxycycline
Approches thérapeutiques
Identification de molécules qui peuvent interférer (PrPC, PrPSc, PrPC/PrPSc ou avec des
co-facteurs de la réplication
- Inhibition de l’expression de la PrP : interférence ARN
- Anticorps anti-PrP (PrPC, PrPSc, PrPC/PrPSc) ScFv Anti-PrP (Parties
variables des chaines H et L obtenues après clonage d’anticorps anti-PrP)
- Dimère soluble de PrP
- Mutants dominants négatifs de la PrP
- Laminin receptor precursor / laminin receptor (LRP/LR)
Vecteurs viraux
 Thérapie Génique
2
3
4
LRP
mutant
ScFv
DN PrP
mutants
5
PrPSc
PrPle cycle de replication et ou interfere
Mettre diapo de la revue avec
PrP
C
ScFv
HSPG
1
LRP/LR
7
Anti PrP - si RNA
PrP mRNA
Anti LRP - si RNA
LRP mRNA
A
- Relano-Gines A., Gabelle A., Lehmann S., Milhavet O. & Crozet C Infectious Disorders - Drug Targets 2009, 9, 58-68
6
rAAV2-PrPScFv
Injection pré-infection
=>
>40 j
2
lentiHIV-PrPFc2
*Injection pré-infection
+72 jours
*Injection à 30j
=> +25 jours
3
4
FIV- PrP-DN à 35j
5
=> Augmentation
de 20%
DN PrP
PrP
mutants
PrPle cycle de replication et ou interfere
Mettre diapoFIV-PrP-DN
de
la revue avec
à 95j
PrP
=> augmentation de 6%
FIV- PrP-DN à 80 et 95j
*rAAV2-ScFv LRP/LR
=> Augmentation de 20%
Injection pré-infection
Pas de délai
LRP
mutant
Sc
C
1
lentiHIV-PrPshRNA
Injection à Anti
56jPrP - si RNA
Délai 19 à 24%
PrP mRNA
HSPG
LRP/LR
7
Anti LRP - si RNA
LRP mRNA
A
- Relano-Gines A., Gabelle A., Lehmann S., Milhavet O. & Crozet C Infectious Disorders - Drug Targets 2009, 9, 58-68
- Toupet K, Compan V, Crozet C, Mourton-Gilles C, Mestre-Francés N, Ibos F, Corbeau P, Verdier JM, Perrier V.
PLoS One. 2008 Jul 23;3(7).
6
Approches thérapeutiques
Identification de molécules qui peuvent interférer (PrPC, PrPSc, PrPC/PrPSc ou avec des
co-facteurs de la réplication
- Inhibition de l’expression de la PrP : interférence ARN
- Anticorps anti-PrP (PrPC, PrPSc, PrPC/PrPSc) ScFv Anti-PrP(Parties
variables des chaines H et L obtenues après clonage d’anticorps anti-PrP)
- Mutants dominants négatifs de la PrP
- Laminin receptor precursor / laminin receptor (LRP/LR)
Diagnostic des maladies à prions basé sur l’apparition des signes cliniques
=>Tardif
=>Courte fenêtre d’intervention thérapeutique
=>Cerveau très endommagé
Stratégie thérapeutique idéale => délivrer des molécules anti-prion et réparer le tissu lésé.
Thérapie cellulaire couplée à la thérapie génique
 Cellules souches neurales « vecteurs »
Médecine régénérative
Challenges de la
médecine régénératives
CONSTRUIRE
RENOUVELLER
REPARER
REGENERER
REMPLACER
Permet d’envisager le traitement
de maladies ou d’affections
réputées incurables ou mal
contrôlées par les thérapies
actuelles.
ANATOMY ART ( GUNTER von HAGEN )
Sources de cellules souches
CS embryonnaires
• Pluripotentes, « source de potentialités »
CS fœtales
• Obtention encadrée
• Multipotentes, plasticité limitée
• Tératogène
• Obtention difficile, Quantités limitée
• Immunogénicité
• Pas de tératogénicité
• Questions éthiques
• Immunogénicité
CS adultes
• Multipotentes, plasticité limitée
• Obtention difficile
• Pas de tératogénicité
• Question éthique
• Stratégie autologue possible
• Pas d’obstacle éthique
IPS
Synthèse des avantages des différentes approches?
Cellules mal connues, Technique jeune
Les stratégies possibles
• L’action directe : remplacement directe des cellules lésées, greffe de NSC
• L’action indirecte :
=> production de molécules agissant sur le site de la lésions (ex :
les CSM à effet immunosuppresseur)
=> activation de la niche (Cellules souches endogènes)
=> association thérapie génique et cellulaire (NSC)
Cellules souches neurales
Amplification
~
differenciation
Lentivirus
Cellules souches nreurales
« cellules médicaments »
Evaluation préclinique
Préparations des cellules NSC (CSEH, CSF, CSA)
- Optimisation des conditions de culture
- Optimisation de la différenciation (CSEH)
- Optimisation du transfert de gènes
Devenir et intégration des cellules transplantées
-Migration, intégration
Innocuité et compatibilité
-Rejet, contrôle de la prolifération
Effet fonctionnel
-comportement
-effet thérapeutique
NSC Fœtales
- Collaboration – thèse Européenne Aroa Relaño-Gines
- Greffes de NSC dérivées d’embryons E14 (WT, PrP-/-, PoPrP)
- Greffes réalisées
avant ou après l’apparition des signes cliniques
stem cells
Hippo , LV
RML J0
(150J)
stéréotaxie
Moment of
the graft
N0 of inoculated
mice
Initial
Final
6
5
7
4
4
4
2
2
8
6
11
10
9
6
11
5
8
3
Grafted cells
BEFORE
SIGNS
Final N0
of grafted
mice
Incubation
Time (days)
Mean
Survival
Time (days)
PrP-/- NSC
5
145 ±1
170 ±0
wtPrP NSC
3
133 ±1
PoPrP NSC
4
145 ±2
PBS
2
121 ±0
23%
141±1
15%
23%
121 ±0
PrP-/- NSC
4
110 ±4
wtPrP NSC
5
109 ±2
PoPrP NSC
4
117 ±3
PBS
4
113 ±5
113 ±5
144 ±4
144 ±4
4
No Graft
X
118 ±0
118 ±0
152 ±2
152 ±2
3
100dpi
AFTER
SIGNS
120dpi
Reference Point
(RP)
Incubation Time
Mean
5
175 ±2
172±1
170 ±0
149 ±0
148 ±6
151 ±5
150±4
150 ±1
C° RP
20
C° PBS AS
20
C° PBS BS
C° PBS BS
15
PrP-/- NF-AS
15
Po NF-AS
Po NF-AS
10
wt NF-AS
10 NF-BS
PrP-/-
PrP-/- NF-BS
C° PBS AS
PrP-/- NF-AS
wt NF-AS
Po NF-BS
5
wt NF-BS
5
wt NF-BS
0
0
90
100
110
120
130
Days
140
150
160
120
130
140
150
Days
160
170
180
5
4
25
C° RP
Po NF-BS
2
4
Survival Time
25
3
4
149 ±0
112±3
N0 of mice
for analysing
RM
L
RM
L
A
B
A
B
No of astrocytes
PrP-/- NSC (PD)
500
PrP-/ -.Bef ore.LVH
450
PBS
400
PrP-/ -.Af t er.LVH
350
PBS
300
250
200
150
100
50
0
8
Cortex
6
Hippocampus
5
Thalamus
4
Hypothalamus
9
Cortex
7
Paraterminal
body
Hippocampus injection site
Lateral ventricle
injection site
Brain
region
s
Développement de stratégies de thérapie
géniques et cellulaires
stem cells
Molécules anti-prion
Lentivirus
Amplification
~
differenciation
- Projet GIS: Véronique Perrier, Sylvain Lehmann
- Prix Victor et Erminia Mescle, FRM
Mutants dominants négatifs de la PrP
Polymorphismes naturels de la PrP protégeant contre
le développement d’une ESST
Population japonaise
E/K au codon 219
K/K: pas de MCJ
Cellules infectées
Kaneko et al., 1997
Ovins
Q/R au 171
R/R : pas de tremblante
Souris transgeniques
Perrier et al., 2002
Pas de conversion des protéines PrP
mutées
Effet dominant négatif des mutants sur
la conversion de la PrP endogène
Réalisation des mutations dominantes négatives
=> MoPrP Q167R, MoPrP Q218K // 171 & 219
Production des lentivirus
- dérivés du Virus de l’Immunodéficience Féline (FIV),
- pseudotypés VSV-G,
Equipe P. Corbeau,
- non réplicatifs,
IGH, Montpellier
- expriment la GFP
Réalisation des mutations dominantes négatives
=> MoPrP Q167R, MoPrP Q218K // 171 & 219
Production des lentivirus
- dérivés du Virus de l’Immunodéficience Féline (FIV),
- pseudotypés VSV-G,
Equipe P. Corbeau,
- non réplicatifs,
IGH, Montpellier
- expriment la GFP
Validation du système lentiviral
Transduction des cellules Prnp-/- [Hpl212 cell line , Onodera T.]
SAF32
NT
GFP
Q167R
Q218K
NT
Effet inhibiteur
ex vivo
Transduction de
cellules infectées par le
prion
GFP
NT
Q167R
GFP
Q167R
Q218K
Q218K
8j 12j 15j 8j 12j 15j 8j 12j 15j 8j 12j 15j
D1
D2
D3
D4
D5
D6
D7
D8
PrPSc
Crozet , Lin, Mettling, Gilles, Corbeau, Lehmann and Perrier. (2004) J. Cell. Science, 117, p5591-5597
Gene therapy for prion diseases? (2004) Research Highlights, Nature, 432, p33
Cellules souches embryonnaires
Audrey Gabelle
Cellules souches embryonnaires
ectoderm
mesoderm
totipotent
cells
blastocyste
inner cell
mass
Pluripotent
ES cells
endoderm
- Cellules souches embryonnaires (ES) CGR8, Dr Austin Smith
(Edimbourg), Pierre Savatier, PRIMASTEM, Lyon
- Auto- renouvellement
- Pluripotentes
Différenciation neurale
ES
Induction neurale
(Benninger et al.,
Brain pathology, 2000)
Formation des Neurosphères
- Boites de pétri
- Milieu neurobasal +B27 +G5
- 8 jours
Induction neurale
Cellules ES
Nestin
- Formation de
«Neurosphères»
GFAP - III tubulin
Caractérisation des cellules (IF, RT-Q-PCR): Nestin +, Sox1+ Sox2+, Oct4 -
Différenciation terminale
- Différenciation « terminale » en Neurones et astrocytes
Tuj1 - GFAP
Greffes des corps embryoïdes
- Injections stereotaxiques
EB
Analyses histologique et
immunohistochimique
Cortex
Hp
Cortex
Hp
hematoxyline
Contrôle
hematoxyline
Greffé
Transduction ES vs EB
(Y.Benninger, 1999)
Formation «Neurosphères»
Cellules ES
Lentivirus
Transduction ES vs EB
(Y.Benninger, 1999)
Cellules ES
Formation «Neurosphères»
Lentivirus FIV- LacZ
Transduction ES vs EB
(Y.Benninger, 1999)
Cellules ES
Formation «Neurosphères»
Lentivirus FIV- LacZ
Transduction ES vs EB
-Corps Embryoïdes (20µl medium (6-10 NFs) + 10 µl virions (107TU))
Lenti gal
Day 8
Non transduit
Day 6
Non transduit
- Lentivirus Q167R PrP / Q218K PrP
Transduction des neurosphères
avec les mutants portant les PrP/DN
GFP
PrP
Greffes
FIV-GFP ES/NFs
GFP
Tumor / GFP
ES résiduelles?
3 protocoles de différenciation neurale
en monocouche
Mc Kay et al., 2000
Smith et al., 2003
Benninger et al. 1999
• Protocole de « sélection »
• Protocole de
« spécification »
•Protocole de
« spécification »
ES/NSC (R. Mc Kay)
ES/NSC (A. Smith)
Nestin
betaIII tubulin
ES/EBs/NSC
(modified from
Y.Benninger)
GFAP
Greffes
ES : CGR8
ES/NSC transduits avec lentivirus GFP
ES/NSC (R. Mc Kay)
ES/NSC (A. Smith)
ES/EBs/NSC
(modified from
Y.Benninger)
90 souris
Survie
Intégration
Différenciation
Tératomes
Transduction des ES/NSC
ES/NSC (A. Smith)
- ES/NSC-GFP
- ES/NSC-PrPQ167R
- ES/NSC-PrPQ218K
- Différenciation in vitro
- Greffe sur souris saines (40)
- Vérification de l’innocuité et
intégration des cellules
greffées
Essais Pré-cliniques
ES/NSC (A. Smith)
Prion ME7
J0
Incubation : 165j
Greffe J90
Dans le Gyrus Denté
-
C°
ES/NSC-GFP
ES/NSC-PrPQ167R
ES/NSC-PrPQ218K
Incubation 8% : augmentation de
15 à 19% chez certains animaux
In c u b a t io n
***
*
C°
G FP
190
Q 167R
Q 218K
180
170
K
R
8
7
Q
2
1
6
1
Q
G
F
P
°
160
C
t e m p s d 'in c u b a t io n
200
Vacuolisation
PrPSc
*
ES/NSC-Q167R
ES/NSC-Q218K
Astrogliose
Peu d’effet
Thérapie génique et
cellulaire des maladies
à prions
Cellules souches
Embryonnaires
Lentivirus
Cellules souches neurales
Impact des maladies à
prions sur les cellules
souches neurales
adultes
Amplification
Rôle de la neurogenèse adulte
dans les maladies à prions
Aroa Relaño-Gines
 Neurogenèse adulte
En situation physiologique
Le gyrus denté
dans l’hippocampe
La zone sous ventriculaire
des ventricules latéraux
D’après Alvarez-Buylla,
Neuron, 2004
 Neurogenèse adulte
En situation physiologique
Le gyrus denté dans
l’hippocampe
La zone sous ventriculaire
des ventricules latéraux
D’après Alvarez-Buylla,
Neuron, 2004
 Neurogenèse adulte
En situation physiologique
Le gyrus denté dans
l’hippocampe
La zone sous ventriculaire
des ventricules latéraux
D’après Alvarez-Buylla,
Neuron, 2004
En situation pathologique :Ischémie, Huntington, Alzheimer
- Stimulation de la neurogenèse adulte
- Production et migration de nouveaux neurones dans les zones lésées
 Mécanismes neuro-développementaux / Mécanismes Neurodégénératifs
- Protéines impliquées dans les maladies neurodégénératives
 protéines impliquées dans le dévéloppement neural
(-Synucléine, Huntingtin, Presenilin…)
 Cas de la PrP
- Fonction PrP mal connue mais rôle dans le processus de neurogenèse
 Neurogenèse adulte
En situation physiologique
Le gyrus denté
dans
l’hippocampe
La zone sous ventriculaire
des ventricules latéraux
D’après Alvarez-Buylla,
Neuron, 2004
En situation pathologique :Ischémie, Huntington, Alzheimer
- Stimulation de la neurogenèse adulte, altération
- Production et migration de nouveaux neurones dans les zones lésées
 Mécanismes neuro-développementaux / Mécanismes Neurodégénératifs
- Protéines impliquées dans les maladies neurodégénératives
 protéines impliquées dans le dévéloppement neural
(-Synucléine, Huntingtin, Presenilin…)
 Cas de la PrP
- Fonction PrP mal connue mais rôle dans le processus de neurogenèse
Hypothèses de travail
Maintien des fonctions cérébrales
Signes cliniques
?
PrPS
Inoculation
c
Mort
Temps
PrPC
Précurseurs neuraux
PrPC
Différenciation neuronale
Survie cellulaire
PrPSc
Précurseurs neuraux
=> propagation?
Fonctions altérées lors de l’infection
=> Inhibition neurogenèse?
Objectifs
Statut des cellules souches adultes
Rôle de ces cellules souches adultes
Stratégies thérapeutiques
Statut de la neurogenèse adulte au cours de l’infection
 Modèles animaux
 180 souris inoculés par le prion ou homogénat sain comme contrôle
 Cinétique de prélèvements des cerveaux (173dpi)
 Analyse
Prions
Propriétés des
précurseurs
neuraux
In situ
 Immunofluorescence
 Immunohistochimie
 Prolifération
 Différenciation, migration
 Mort cellulaire
 Présence de PrPSc
 Mise en culture
des Cellules souches neurales
(CSN)
 Prolifération
 Différenciation
 Survie cellulaire
 Présence de PrPSc
 Modèles animaux
 Souris infectées par le prion
Prions
- Inoculation of 180 souris
- 2 injections BrdU
 Cinétique de prélèvements des cerveaux
Prions
J0
J62
J125
J92
J155
J173
BrdU
J62+30j
- 8 souris pour les études de prolifération
- 8 souris pour les études de survie
- 8 souris pour mise en culture (Hippo + VL)
J92+30j
J125+30j
J155+18-19j
PrPSc accumulation in NSC and
neuroblasts area in prion
infected mice
• PrPSc Accumulation
NSC isolated from prion infected mice
accumulate PrPSc
• differentiation
PrPSc accumulation in adult NSC
impaired neurons production
• differentiation
PrPSc accumulation in adult NSC
impaired neurons production
Increase of apoptosis in infected
cells
**
**
• Prolifération
L’infection modifie les propriétés prolifératives des NSC
•
Étude basée sur l’incorporation de l’EdU par les cellules en prolifération
**
Hippo ME7
hippo sain
LV ME7
LV sain
**
• apoptosis
Le prion altère la viabilité des cellules en prolifération
•
Évaluation de l’activation des caspases 3 et 7 impliquée dans l’apoptose
**
**
Thérapie génique et
cellulaire des maladies
à prions
Cellules souches
Embryonnaires
Lentivirus
Cellules souches neurales
Impact des maladies à
prions sur les cellules
souches neurales
adultes
Amplification
IGH CNRS UPR 1142
Aroa Relaño-Ginès
Claire Hamela
Audrey Gabelle
Stella Cosenza
Véronique Perrier
Maxime Bélondrade
IRB- U1040 INSERM
Sylvain Lehmann
Cécile Monzo
Félicie Radreau
Laura Auboyer
Cosette Le Souder
Constance Delaby
Christophe Hirtz
Laurent Tiers
Monique Provansal
Jérôme Vialaret
Pauline Bros
Baptiste Gor
Amandine Moulinier
Bernard Klein
U710- Mécanismes moléculaires dans les démences neurodégénératives. Université Montpellier
II Véronique Perrier Montpellier II
Laboratoire Lentivirus et Transfert de Gènes, IGH, Montpellier
Yea-Lih Lin, Isabelle de Vidi, Clément Mettling, Pierre Corbeau