Programma - Formazione e aggiornamento del personale

Obiettivi del corso
Fornire le basi teoriche relative a:
• fisico-chimica dei fluorocromi
• tipologia e campi di applicazione dei fluorocromi
• principi fondamentali di microscopia a campo largo e
in modalità confocale
• principi fondamentali di citometria a flusso
• modalità di preparazione dei campioni
• interpretazione dei risultati
Fornire le nozioni pratiche per l’utilizzo del microscopio
in epifluorescenza e del citofluorimetro capace di
selezionare cellule (FACS)
• capacità di analizzare campioni biologici al
microscopio in epifluorescenza e al FACS
Affiliazione docenti
Cinzia Aiello, U.O. Bioterapie
Roberto Benelli, U.O. Immunologia
Silvia Boero, S.S. Oncologia Molecolare e Angiogenesi
Simona Boccardo, U.O. Anatomia e Citoistologia Patologica
Patrizio Castagnola, S.S. Biofisica e Citometria
Katia Cortese, DIMES, Università degli Studi, Genova
Giovanna Cutrona, S.S. Diagnostica Molecolare
Alessandra Donadini, U.O. Patologia Molecolare Integrata
Marina Fabbi, U.O. Terapia Immunologica
Annalisa Kunkl, U.O. Anatomia Patologica Ospedaliera
Fabrizio Loiacono, U.O. Immunologia
Massimo Maffei, DIMI, Università degli Studi, Genova
Paolo Malatesta, U.O. Trasferimento Genico
Rosa Mangerini, U.O. Anatomia e Citoistologia Patologica
Claudia Manzini, U.O. Immunologia
Stefania Martini, U.O. Immunologia
Mauro Megna, S.S. Diagnostica Molecolare
Simona Minghelli, S.S. Oncologia Molecolare e Angiogenesi
Elisa Montaldo, U.O. Immunologia
Massimiliano Monticone, U.O. Bioterapie
Alessandra Musso, S.S. Oncologia Molecolare e Angiogenesi
Alessandro Poggi, S.S. Oncologia Molecolare e Angiogenesi
Daniele Reverberi, U.O. Oncologia Medica C
Sandra Salvi, U.O. Anatomia e Citoistologia Patologica
Serena Varesano, U.O. Anatomia e Citoistologia Patologica
Roberta Vené, U.O. Oncologia Molecolare e Angiogenesi
Simona Zupo, S.S. Diagnostica Molecolare
IRCCS A.O.U. San Martino – IST, Genova
Diana Campioni, Dip. Scienze Mediche, Università, Ferrara
Cesare Usai, Istituto di Biofisica, CNR Genova
Destinatari
Il corso è rivolto al personale interno ed esterno del SSR;
accreditato per le figure professionali del biologo, chimico,
fisico, medico e tecnico sanitario di laboratorio biomedico. I
partecipanti saranno selezionati dai responsabili scientifici sulla
base della presentazione di un breve CV (max una pagina) che
dimostri sia esperienza per le materie del corso che la necessità
di una formazione teorico-pratica e sull’ordine cronologico di
presentazione dell’iscrizione.
Modalità di iscrizione
Le schede di iscrizione devono pervenire alla S.S. Formazione
e Aggiornamento del personale entro il 20 settembre 2014.
- il personale dipendente mediante la rete intranet aziendale
- il personale esterno attraverso il sito internet:
http://formazione.hsanmartino.it
Per i partecipanti esterni è prevista una quota di € 300,00 iva
esente.
Il versamento della quota di iscrizione per i partecipanti
esterni dovrà essere effettuato a seguito di conferma
dell’ammissione al corso.
IRCCS AZIENDA OSPEDALIERA UNIVERSITARIA SAN MARTINO
IST - ISTITUTO NAZIONALE PER LA RICERCA SUL CANCRO
Corso di aggiornamento aperto
Citometria a flusso e
microscopia: corso di base
per applicazioni di ricerca
sperimentale e clinica
Modalità di pagamento
bonifico bancario intestato a IRCCS Azienda Ospedaliera
Universitaria San Martino IST – Istituto Nazionale per la
Ricerca sul Cancro – Genova c/c 22869.90  IBAN
IT18Q0617501594000002286990
Con il contributo di
BECKMAN-COULTER
BECTON DICKINSON
CARL ZEISS
LIFE TECHNOLOGIES
MERCK – MILLIPORE
MILTENYI BIOTEC
PARTEC ITALIA
Per informazioni
Dott. Claudio Rosellini
Tel. 010 55552181 - [email protected]
S.S. Formazione e Aggiornamento del personale
Dirigente Responsabile: Dott.ssa Elisabetta Rovini
IRCCS A.O.U. San Martino - IST
Largo R. Benzi 10 – 16132 Genova
http://formazione.hsanmartino
Genova
20 – 22 ottobre 2014
Aula A
Centro di Biotecnologie Avanzate
IRCCS A.O.U. San Martino – IST
Responsabili Scientifici
Dott. Patrizio Castagnola
Dott. Alessandro Poggi
Programma scientifico
20 ottobre
8.15 - 8.30
Presentazione del Corso - P. Castagnola, A. Poggi
8.30 – 9.30
 I fluorocromi e tecniche di preservazione del
campione - P. Castagnola
9.30 - 11.30
 Microscopia ad epifluorescenza ad ampio campo e
confocale - C. Usai
21 ottobre
8.30 – 9.30
 Introduzione a ImageJ / Fiji: un approccio teoricopratico all’analisi dell’immagine – P. Malatesta
9.30 - 10.30
 Metodiche di ibridazione in situ: FISH-CISH e SISH
S. Salvi
8.30 – 9.30
 Immunofenotipo linfocitario in citofluorimetria:
utilità diagnostica - S. Zupo
9.30 – 10.30
 Valutazione in citometria a flusso della malattia
minima residua nella leucemia mieloide acuta
dell’adulto- A. Kunkl
10.30 - 11.00 Intervallo
12.00 - 13.00
 La moderna microscopia elettronica in biologia:
dalle tecniche standard di osservazione alla
microscopia correlativa CLEM K. Cortese
11.00 – 12.00
 Applicazioni della microscopia e citofluorimetria
nella ricerca sperimentale - A. Poggi
12.00 - 13.00
 Analisi di ROS e apoptosi mediante citofluorimetria
R. Venè
13.00 - 14.30 Intervallo
13.00 - 14.30 Intervallo
14.30 - 15.30 Confronto dibattito tra partecipanti-relatori
15.30 - 17.30
 Osservazioni al microscopio ed acquisizioni di
Immagini – R. Benelli, P. Castagnola, M. Fabbi, P.
Malatesta, S. Minghelli, A. Poggi
 Analisi di campioni FISH – S. Boccardo, S.
Varesano
 Analisi ad alta risoluzione del DNA Index. Sorting di
sublinee DNA diploidi e aneuploidi - A. Donadini,
M. Maffei, M. Monticone, C. Aiello
 Analisi multiparametrica di marcatori di linfociti NK
e T gamma delta. Analisi di proliferazione al
citofluorimetro - S. Boero, F. Loiacono, C.
Manzini, S. Martini, E. Montaldo, A. Musso
 Analisi di sottopopolazioni cellulari mediante
citometria– G. Cutrona, R. Mangerini, M. Megna
 Applicazioni di Cell Sorting in oncologia
sperimentale – D. Reverberi
 Analisi di apoptosi e ROS mediante FACS – R.
Venè
14.30 - 15.30 Confronto dibattito tra partecipanti-relatori
15.30 - 17.30
 Osservazioni al microscopio ed acquisizioni di
Immagini – R. Benelli, P. Castagnola M. Fabbi, P.
Malatesta, S. Minghelli, A. Poggi
 Analisi di campioni FISH – S. Boccardo, S.
Varesano
 Analisi ad alta risoluzione del DNA Index. Sorting di
sublinee DNA diploidi e aneuploidi - A. Donadini,
M. Maffei, M. Monticone, C. Aiello
 Analisi multiparametrica di marcatori di linfociti NK
e T gamma delta. Analisi di proliferazione al
citofluorimetro - S. Boero, F. Loiacono, C.
Manzini, S. Martini, E. Montaldo, A. Musso
 Analisi di sottopopolazioni cellulari mediante
citometria– G. Cutrona, R. Mangerini, M. Megna
 Applicazioni di Cell Sorting in oncologia
sperimentale – D. Reverberi
 Analisi di apoptosi e ROS mediante FACS - R. Vené
11.30 - 12.00 Intervallo
22 ottobre
10.30 - 11.00 Intervallo
11.00 - 12.00
 Analisi e isolamento di cellule fluorescenti mediante
citofluorimetria - D. Reverberi
12.00 - 13.00
 Caratterizzazione immunofenotipica di cellule
mesenchimali prima e dopo espansione in vitro – D.
Campioni
13.00 - 14.30 Intervallo
14.30 - 15.30 Confronto dibattito tra partecipanti-relatori
15.30 - 17.00
 Osservazioni al microscopio ed acquisizioni di
Immagini - R. Benelli, P. Castagnola M. Fabbi, P.
Malatesta, S. Minghelli, A. Poggi
 Analisi di campioni FISH – S. Boccardo, S.
Varesano
 Analisi ad alta risoluzione del DNA Index. Sorting di
sublinee DNA diploidi e aneuploidi - A. Donadini,
M. Maffei, M. Monticone, C. Aiello
 Analisi multiparametrica di marcatori di linfociti NK
e T gamma delta. Analisi di proliferazione al
citofluorimetro - S. Boero, F. Loiacono, C.
Manzini, S. Martini, E. Montaldo, A. Musso
 Applicazioni di sottopopolazioni cellulari mediante
citometria- G. Cutrona, R. Mangerini, M. Megna
 Applicazioni di Cell Sorting in Oncologia
Sperimentale - D. Reverberi
 Analisi di apoptosi e ROS mediante FACS - R. Vené
17.00 – 17.30 Consegna questionari ECM

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