Poster herunterladen - Labor für medizinische Mikrobiologie Mölbis

Molekularbiologische Charakterisierung von Trichophyton rubrum und
Trichophyton interdigitale isoliert von Patienten mit Onychomykose –
Identifizierung der Dermatophyten mit PCR und Sequenzierung der ITS-Region der rRNA sowie
MALDI-TOF Massenspektroskopie
Mehlhorn C.1, Uhrlaß S. 1, Schroedl W.2, Bartosch T.2, Maier T.3, Krüger C.1, Paasch U. 4, Simon J.-C.4, Nenoff P.1
1Labor
für medizinische Mikrobiologie, Partnerschaft Dr. C. Krüger & Prof. P. Nenoff, Mölbis
2Veterinärmedizinische Fakultät, Universität Leipzig, Institut für Bakteriologie und Mykologie, Leipzig
3Bruker Daltonik GmbH, Microbiological Laboratory/R&D Bioanalytics, Bremen
4Universitätsklinikum Leipzig AöR und Medizinische Fakultät der Universität Leipzig, Klinik und Poliklinik für Dermatologie, Venerologie und Allergologie, Leipzig
Fragestellung
Kultur
Mikroskopie und Nativpräparat
Die Diagnostik der Onychomykose mit Nativpräparat und
Pilzkulturen wird heute durch molekularbiologische Methoden
ergänzt. Die Validität des molekularbiologischen DermatophytenDNA-Nachweises direkt im Nagelmaterial mit PCR wurde mit
1)
molekularen Methoden überprüft.
Patientenkollektiv:
Luftmyzelpigmentierung
16%
3)
2)
Durchschnittsalter der Patienten: 62 Jahre
Trichophyton
interdigitale
23
(+1.T.men+1T.ton)
Trichophyton
rubrum
34
Trichophyton
interdigitale
19
Anzahl der Proben
35
Trichophyton
rubrum
31
30
25
20
15
10
5
0
keine
wenig
mäßig
34%
4)
Abb. 1 Charakteristische Mikromorphologie
von Trichophyton interdigitale:
1) zylinderförmige
Makrokonidien
2) Mikrokonidien
Ergebnis
Nativpräprat
(Botrytisform)
3) Mikrokonidien
(baumartig
34%
verzweigt)
4) Spiralhyphen
66%
Verteilung mikromorphologischer
Merkmale zwischen TR und TI
Kulturnegativ
53
häufig
positiv
weiß/
bräunlich - rosa
Kolonietextur
14%
9%
61%
Pigmentierungen der
Kolonieunterseite
30%
negativ
18%
7%
1)
2)
3)
4)
1)
2)
3)
4)
5)
6)
7)
8)
5)
6)
7)
8)
Abb. 3 Vorder (1-4) - und Rückseiten (5-8) ausgewählter Kulturen von Trichophyton rubrum auf
Sabouraudagar
Material: 109 Nagelproben,
TR oder TI mit Kultur und/oder
PCR nachweisbar
konventionell: BlancophorPräparat und kulturelle
Diagnostik
molekularbiologisch: PCRELISA und Sequenzierung der
Dermatophyten-ITS-Region
(18S rRNA, ITS1, 5.8S rRNA,
ITS2, 28S rRNA)
zusätzlich: Analyse mit
Matrix-Assisted Laser
Desorption/Ionisation Time-OfFlight Massenspektrometrie
(MALDI-TOF MS)
Schlussfolgerung
100
Ergebnisse
100%
90%
80%
70%
60%
50%
40%
30%
20%
10%
0%
MALDI-TOF MS
Vergleich der verschiedenen Methoden
zur Dermatophytenbestimmung
100%
99,08%
97,17%
95,24%
66%
Gruppe der
Trichophyton
interdigitale
(anthropophil, TI)
97
9%
unpigmentiert
gelb
gelbbraun
orange
braun
rotschwarz
Abb. 4 Vorder (1-4) - und Rückseiten (5-8) ausgewählter Kulturen von Trichophyton interdigitale auf
Sabouraudagar
Phylogenie ITS 2-Region rRNA
Gruppe der
Trichophyton
rubrum (TR)
wattig/wollig/
flauschig
granulär/pudrig/
gipsig
gemischtes
Wachstum
25%
27%
Vielfalt der Dermatophytenkulturen
Methoden
weiß/ creme
50%
109 Nagelproben
Kulturpositiv
56
weiß
Trichophyton tonsurans (T.ton)
Die molekularen Methoden
Trichophyton mentagrophytes
sind sehr gut geeignet, die
(sensu strictu, zoophil, T.men)
Dermatophyten bei
Abb. 4 Phylogenetischer Baum (NeighborOnychomykose direkt im
Joining Methode, Jalview 2.9, Bootstrap- TI_
TI_
Nagelmaterial, ohne vorherige Werte kalkuliert mit MEGA)
TI_
TI_
Kultivierung, mit hoher
TI_
TI_
Zuverlässigkeit zu identifizieren.
TI_
Abb.
6
Ausschnitte
des
T.tons_
Insbesondere bei Kultur-negativen
T.ment_
Multiplen Alignments der
TR_
Proben hat sich die PCR zum DNAITS 2-Region der rRNA
TR_
TR_
Dermatophyten-Nachweis als eine
(Jalview 2.9), identische
TR_
Säulen nicht gezeigt
TR_
hochspezifische und empfindliche
Methode erwiesen.
Mit MALDI-TOF MS waren
TR und TI sehr gut
voneinander zu
unterscheiden, trotz
großer Ähnlichkeit der
Spektren. Innerhalb der
Spezies ließen sich klonale
Unterschiede feststellen.
Abb. 5 MALDI-TOF MS Spektren von Trichophyton rubrum
Sequenzierung der ITS 2-Region rRNA
Korrespondenzadresse: Carolin Mehlhorn, Labor für medizinische Mikrobiologie, Mölbiser Hauptstraße 8, 04571 Rötha, OT Mölbis,
Deutschland, Tel. 034347-50 323
www.mykologie-experten.de