PARASSITOLOGIA

PARASSITOLOGIA
TOXOPLASMOSI, PARASSITI
Services suisses d'essais d’aptitude
Schweizerische Eignungsprüfungsdienststellen
Servizi svizzeri di prove valutative interlaboratorio
Swiss proficiency testing services
SPTS 004
Caratteristiche
Nome del programma
Frequenza delle inchieste
Identificazione del campione
Numero di campioni per inchiesta
Tipo di campione
Tipo di valutazione
1a inchiesta organizzata nel
Numero di partecipanti (2014)
Toxoplasmosi: P1
4 volte l’anno
Toxoplasmosi: P1
1a2
P1: Siero liofilizzato o liquido
Qualitativa e quantitativa
1996
Toxoplasmosi: 27
Emat. parassit.: P2
Emat. parassit.: P3, P4
P3, P4: Vetrino colorato
Emat. parassit.: 85
Descrizione
•
•
Toxoplasmosi: il campione è accompagnato da un’anamnesi corrispondente a un caso reale. Dopo il
dosaggio degli anticorpi, il laboratorio può rispondere ad un questionario riguardante i test da effettuare,
l’interpretazione e le raccomandazioni per un controllo appropriato del paziente.
Parassiti: per ogni inchiesta, i laboratori ricevono due vetrini colorati accompagnati da un’anamnesi.
Conservati a temperatura ambiente, al riparo dalla luce e protetti da un vetrino coprioggetto, essi possono
servire da collezione di riferimento. Vetrini supplementari possono essere ordinati presso il CSCQ e sono
disponibili fino ad esaurimento delle scorte.
Parametri valutati
Abbrevia
-zione
Codice
UFAS
Valutazione
QUALAB –
criterio di
qualità
102 ; M- Toxoplasmosi, anticorpi IgG
ToxoIgG
3549.00
Giusto
Giusto
1,8
kU/L
103 ; M- Toxoplasmosi, anticorpi IgM
ToxoIgM
3553.00
Giusto
Giusto
7,0
kU/L
Giusto
Giusto
-----
-----
Codice
CSCQ
Nome
1200 ; M- Ematologia parassitaria
9012
9011
Qualità striscio Parasitol.
Qualità colorazione Parasitol.
3533.00
3560.00
QStrisPara
--QColorPara
--Parassit
Tolleranz Risultato:
a CSCQ esempio
Unità di
misura
Genere e specie
Parassitemia (% o ‰)
Buono
--Buono
---
; Parametri attualmente sottoposti obbligatoriamente a un CQE, secondo la QUALAB.
Valutazione QUALAB – “criteri di numero”: per tutti i parametri, il 75% dei risultati deve essere conforme.
Conservazione, stabilità e pre–analitica
•
•
•
•
•
•
Il campione liquido o liofilizzato va conservato in frigorifero (2 – 6 °C).
Il campione è stabile fino alla data di scadenza indicata sul flacone.
Portare il campione a temperatura ambiente (20 – 25 °C), circa 30 minuti, prima di eseguire le analisi.
Appena prima di effettuare le analisi, omogeneizzare il campione capovolgendolo delicatamente o
utilizzando un agitatore a rulli. Evitare la formazione di schiuma.
Dopo la ricezione del campione, le analisi vanno eseguite il più rapidamente possibile e i risultati vanno
spediti al CSCQ entro la data indicata sul formulario dei risultati (2 settimane dopo la data di spedizione,
salvo eccezioni).
Per la ricostituzione del campione liofilizzato, vedere sotto ”Campione di controllo”.
CSCQ
Manuale
Parassitologia
© CSCQ
Versione: 14.00
Aggiornamento: 2014/01/20
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Campione di controllo
Qualsiasi campione biologico dev’essere considerato come potenzialmente infettivo.
Ricostituzione del campione liofilizzato
1. Far precipitare tutto il liofilizzato sul fondo del flacone.
2. Aprire delicatamente il flacone evitando assolutamente ogni perdita di materiale (lasciar penetrare aria
prima di aprire completamente il flacone).
3. Utilizzando una pipetta calibrata e certificata, aggiungere in una volta sola il volume esatto di acqua
distillata (o bi-distillata) indicato sul flacone. L’acqua deve essere a temperatura ambiente.
4. Richiudere il flacone e lasciar riposare per 15–30 minuti al riparo dalla luce senza agitarlo.
5. Mescolare delicatamente il campione per inversione (circa 30 volte) oppure per 10 min. utilizzando un
agitatore a rulli o rotante. Evitare la formazione di schiuma.
6. Verificare che tutto il liofilizzato si sia sciolto completamente e procedere alle analisi.
Parassiti
• Gli strisci sono generalmente colorati con il metodo May–Grünwald/Giemsa (pH 7,2).
Goccia spessa sono generalmente colorati con il metodo Giemsa (pH 7,2).
Unità di misura e fattore di conversione
Parassiti: la parassitemia viene espressa in % o in ‰ rispetto al numero di globuli rossi infettati.
Particolarità legate a metodi e/o apparecchi
Parassiti
• Iniziare l’osservazione al microscopio utilizzando dapprima un obiettivo con ingrandimento debole (100 x).
• In seguito, procedere ad un’osservazione con obiettivo ad immersione (ingrandimento ideale: 600-700x).
• Codifica dei risultati:
Codice Stadio osservato
001
002
003
004
005
006
007
Codice Genere e specie
Trofozoiti giovani (forma ad anello)
Trofozoiti maturi
Schizonti
Gametociti
Tripomastigote
Microfilarie
Altri stadi osservati: precisare
201
202
203
204
205
Plasmodium falciparum
206
207
208
209
210
211
212
213
214
215
Babesia sp.
Loa loa
Wuchereria bancrofti
Brugia malayi
Mansonella perstans
Mansonella streptocerca
Mansonella ozzardi
A n n o t a z i o n i
CSCQ
Manuale
Parassitologia
© CSCQ
Plasmodium malariae
Plasmodium vivax
Plasmodium ovale
Plasmodium vivax / Plasmodium ovale
difficilmente differenziabile
Trypanosoma gambiense / rhodesiense
Leishmania sp.
Altri generi o specie osservati: precisare
p e r s o n a l i
Versione: 14.00
Aggiornamento: 2014/01/20
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